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金柑(Fortunella Swingle)乙醇提取物防治代谢综合征及其主要酚类物质抗癌活性的研究

摘要第8-12页
Abstract第12-15页
第1章 文献综述第16-34页
    1.1 金柑属(Fortunella) 植物简介第16-18页
        1.1.1 金柑属植物分类概述第16页
        1.1.2 金柑属植物的主要栽培种及其分布第16-17页
        1.1.3 金柑果实的利用情况及存在问题第17-18页
    1.2 生物活性物质第18-25页
        1.2.1 类黄酮第18-20页
        1.2.2 酚酸第20页
        1.2.3 类柠檬苦素第20-21页
        1.2.4 多糖第21页
        1.2.5 类胡萝卜第21-22页
        1.2.6 挥发油第22页
        1.2.7 生物活性物质提取,分离和检测方法第22-25页
    1.3 抗氧化活性第25页
    1.4 柑橘果实预防代谢综合征研究进展第25-29页
        1.4.1 柑橘预防代谢综合征作用第26-28页
        1.4.2 柑橘防治代谢综合征分子机理研究第28-29页
    1.5 柑橘果实抗癌功效研究进展第29-32页
        1.5.1 抗癌类药物及其作用机制第29-31页
        1.5.2 柑橘抗癌功效及其作用机制第31-32页
    1.6 柑橘果实其它活性研究第32-34页
第2章 引言第34-38页
    2.1 研究的目的和意义第34-35页
    2.2 研究的主要内容第35-36页
        2.2.1 金柑果实醇提物成分鉴定及抗氧化活性第35页
        2.2.2 金柑果实醇提物防治代谢综合征研究第35页
        2.2.3 金柑生物活性物质抗癌功效研究第35-36页
    2.3 论文研究的技术路线第36-38页
第3章 金柑果实提取物化学成分鉴定及抗氧化活性分析第38-55页
    3.1 材料与方法第38-42页
        3.1.1 实验材料第38-39页
        3.1.2 主要实验试剂和仪器设备第39-40页
        3.1.3 实验方法第40-42页
    3.2 结果与分析第42-51页
        3.2.1 金柑果实乙醇提取物UPLC Q-TOF/MS分析第42-49页
        3.2.2 相对定量分析第49-50页
        3.2.3 抗氧化活性分析第50-51页
    3.3 讨论第51-53页
        3.3.1 金柑果实化合物组成分析第51-52页
        3.3.2 金柑果实抗氧化活性第52-53页
    3.4 小结第53-55页
第4章 金柑果实提取物防治代谢综合征的研究第55-75页
    4.1 材料与试剂第55-56页
        4.1.1 实验材料第55页
        4.1.2 实验试剂第55页
        4.1.3 实验耗材第55-56页
        4.1.4 实验仪器第56页
    4.2 实验动物,饲料和细胞第56-57页
        4.2.1 实验动物第56页
        4.2.2 实验饲料第56页
        4.2.3 细胞株及培养第56-57页
    4.3 实验方法第57-59页
        4.3.1 金柑果实的提取第57页
        4.3.2 动物实验第57-58页
        4.3.3 腹腔注射葡萄糖耐量实验(Glucose tolerance test,GTT)第58页
        4.3.4 胰岛素耐受量实验 (Insulin tolerance test, ITT)第58页
        4.3.5 小鼠血清及组织样本采集与处理第58页
        4.3.6 小鼠血清脂质检测第58-59页
    4.4 实验结果第59-70页
        4.4.1 预防实验结果第59-64页
        4.4.2 治疗实验结果第64-68页
        4.4.3 分子机理研究结果第68-70页
    4.5 讨论第70-73页
        4.5.1 金柑果实提取物对小鼠代谢综合征的防治作用第70-71页
        4.5.2 金柑果实提取物防治代谢综合征的机制研究第71-72页
        4.5.3 金柑提取物中防治代谢综合征的功能性成分第72-73页
    4.6 小结第73-75页
第5章 金柑主要生物活性物质抗癌功效研究第75-93页
    5.1 试剂耗材第75-76页
        5.1.1 实验试剂第75页
        5.1.2 实验仪器第75-76页
        5.1.3 试剂配置第76页
    5.2 细胞株及培养第76页
    5.3 实验方法第76-80页
        5.3.1 生物活性物质或提取物对体外微管聚合蛋白的影响第76-78页
        5.3.2 细胞存活实验第78页
        5.3.3 流式细胞分析第78-79页
        5.3.4 细胞形态观察第79页
        5.3.5 免疫荧光显微技术第79-80页
    5.4 实验结果第80-88页
        5.4.1 生物活性物质体外微管蛋白聚合影响筛选结果第80-81页
        5.4.2 GA对体外微管蛋白聚合影响第81-82页
        5.4.3 GA对HeLa细胞存活率的影响第82页
        5.4.4 GA对HepG2细胞存活率影响第82-83页
        5.4.5 GA对HeLa细胞周期的影响第83-84页
        5.4.6 GA对有丝分裂期HeLa细胞纺锤体影响第84-85页
        5.4.7 GA增加HeLa细胞多核细胞的形成第85-87页
        5.4.8 GA对HeLa细胞中心体分布的影响第87-88页
    5.5 讨论第88-91页
        5.5.1 GA对癌细胞存活率的影响第88-89页
        5.5.2 GA对HeLa细胞有丝分裂的影响第89-90页
        5.5.3 GA对细胞中心体分布的影响第90-91页
    5.6 小结第91-93页
第6章 结束语第93-95页
    6.1 本研究结论第93-94页
        6.1.1 金柑果实化学成分鉴定及抗氧化活性分析第93页
        6.1.2 金柑果实提取物抗代谢综合征功效研究第93-94页
        6.1.3 金柑活性物质抗癌功效研究第94页
    6.2 本研究主要特色和创新点第94-95页
第7章 展望第95-97页
参考文献第97-111页
附录第111-117页
致谢第117-119页
发表论文和参研课题第119页

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