摘要 | 第8-12页 |
Abstract | 第12-15页 |
第1章 文献综述 | 第16-34页 |
1.1 金柑属(Fortunella) 植物简介 | 第16-18页 |
1.1.1 金柑属植物分类概述 | 第16页 |
1.1.2 金柑属植物的主要栽培种及其分布 | 第16-17页 |
1.1.3 金柑果实的利用情况及存在问题 | 第17-18页 |
1.2 生物活性物质 | 第18-25页 |
1.2.1 类黄酮 | 第18-20页 |
1.2.2 酚酸 | 第20页 |
1.2.3 类柠檬苦素 | 第20-21页 |
1.2.4 多糖 | 第21页 |
1.2.5 类胡萝卜 | 第21-22页 |
1.2.6 挥发油 | 第22页 |
1.2.7 生物活性物质提取,分离和检测方法 | 第22-25页 |
1.3 抗氧化活性 | 第25页 |
1.4 柑橘果实预防代谢综合征研究进展 | 第25-29页 |
1.4.1 柑橘预防代谢综合征作用 | 第26-28页 |
1.4.2 柑橘防治代谢综合征分子机理研究 | 第28-29页 |
1.5 柑橘果实抗癌功效研究进展 | 第29-32页 |
1.5.1 抗癌类药物及其作用机制 | 第29-31页 |
1.5.2 柑橘抗癌功效及其作用机制 | 第31-32页 |
1.6 柑橘果实其它活性研究 | 第32-34页 |
第2章 引言 | 第34-38页 |
2.1 研究的目的和意义 | 第34-35页 |
2.2 研究的主要内容 | 第35-36页 |
2.2.1 金柑果实醇提物成分鉴定及抗氧化活性 | 第35页 |
2.2.2 金柑果实醇提物防治代谢综合征研究 | 第35页 |
2.2.3 金柑生物活性物质抗癌功效研究 | 第35-36页 |
2.3 论文研究的技术路线 | 第36-38页 |
第3章 金柑果实提取物化学成分鉴定及抗氧化活性分析 | 第38-55页 |
3.1 材料与方法 | 第38-42页 |
3.1.1 实验材料 | 第38-39页 |
3.1.2 主要实验试剂和仪器设备 | 第39-40页 |
3.1.3 实验方法 | 第40-42页 |
3.2 结果与分析 | 第42-51页 |
3.2.1 金柑果实乙醇提取物UPLC Q-TOF/MS分析 | 第42-49页 |
3.2.2 相对定量分析 | 第49-50页 |
3.2.3 抗氧化活性分析 | 第50-51页 |
3.3 讨论 | 第51-53页 |
3.3.1 金柑果实化合物组成分析 | 第51-52页 |
3.3.2 金柑果实抗氧化活性 | 第52-53页 |
3.4 小结 | 第53-55页 |
第4章 金柑果实提取物防治代谢综合征的研究 | 第55-75页 |
4.1 材料与试剂 | 第55-56页 |
4.1.1 实验材料 | 第55页 |
4.1.2 实验试剂 | 第55页 |
4.1.3 实验耗材 | 第55-56页 |
4.1.4 实验仪器 | 第56页 |
4.2 实验动物,饲料和细胞 | 第56-57页 |
4.2.1 实验动物 | 第56页 |
4.2.2 实验饲料 | 第56页 |
4.2.3 细胞株及培养 | 第56-57页 |
4.3 实验方法 | 第57-59页 |
4.3.1 金柑果实的提取 | 第57页 |
4.3.2 动物实验 | 第57-58页 |
4.3.3 腹腔注射葡萄糖耐量实验(Glucose tolerance test,GTT) | 第58页 |
4.3.4 胰岛素耐受量实验 (Insulin tolerance test, ITT) | 第58页 |
4.3.5 小鼠血清及组织样本采集与处理 | 第58页 |
4.3.6 小鼠血清脂质检测 | 第58-59页 |
4.4 实验结果 | 第59-70页 |
4.4.1 预防实验结果 | 第59-64页 |
4.4.2 治疗实验结果 | 第64-68页 |
4.4.3 分子机理研究结果 | 第68-70页 |
4.5 讨论 | 第70-73页 |
4.5.1 金柑果实提取物对小鼠代谢综合征的防治作用 | 第70-71页 |
4.5.2 金柑果实提取物防治代谢综合征的机制研究 | 第71-72页 |
4.5.3 金柑提取物中防治代谢综合征的功能性成分 | 第72-73页 |
4.6 小结 | 第73-75页 |
第5章 金柑主要生物活性物质抗癌功效研究 | 第75-93页 |
5.1 试剂耗材 | 第75-76页 |
5.1.1 实验试剂 | 第75页 |
5.1.2 实验仪器 | 第75-76页 |
5.1.3 试剂配置 | 第76页 |
5.2 细胞株及培养 | 第76页 |
5.3 实验方法 | 第76-80页 |
5.3.1 生物活性物质或提取物对体外微管聚合蛋白的影响 | 第76-78页 |
5.3.2 细胞存活实验 | 第78页 |
5.3.3 流式细胞分析 | 第78-79页 |
5.3.4 细胞形态观察 | 第79页 |
5.3.5 免疫荧光显微技术 | 第79-80页 |
5.4 实验结果 | 第80-88页 |
5.4.1 生物活性物质体外微管蛋白聚合影响筛选结果 | 第80-81页 |
5.4.2 GA对体外微管蛋白聚合影响 | 第81-82页 |
5.4.3 GA对HeLa细胞存活率的影响 | 第82页 |
5.4.4 GA对HepG2细胞存活率影响 | 第82-83页 |
5.4.5 GA对HeLa细胞周期的影响 | 第83-84页 |
5.4.6 GA对有丝分裂期HeLa细胞纺锤体影响 | 第84-85页 |
5.4.7 GA增加HeLa细胞多核细胞的形成 | 第85-87页 |
5.4.8 GA对HeLa细胞中心体分布的影响 | 第87-88页 |
5.5 讨论 | 第88-91页 |
5.5.1 GA对癌细胞存活率的影响 | 第88-89页 |
5.5.2 GA对HeLa细胞有丝分裂的影响 | 第89-90页 |
5.5.3 GA对细胞中心体分布的影响 | 第90-91页 |
5.6 小结 | 第91-93页 |
第6章 结束语 | 第93-95页 |
6.1 本研究结论 | 第93-94页 |
6.1.1 金柑果实化学成分鉴定及抗氧化活性分析 | 第93页 |
6.1.2 金柑果实提取物抗代谢综合征功效研究 | 第93-94页 |
6.1.3 金柑活性物质抗癌功效研究 | 第94页 |
6.2 本研究主要特色和创新点 | 第94-95页 |
第7章 展望 | 第95-97页 |
参考文献 | 第97-111页 |
附录 | 第111-117页 |
致谢 | 第117-119页 |
发表论文和参研课题 | 第119页 |