| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-22页 |
| 一、活性氧 | 第12-18页 |
| 1.1 植物体内ROS的产生 | 第12-14页 |
| 1.1.1 叶绿体内ROS的产生 | 第12-13页 |
| 1.1.2 线粒体内ROS的产生 | 第13-14页 |
| 1.1.3 过氧化物酶体内ROS的产生 | 第14页 |
| 1.1.4 其他部位ROS的产生 | 第14页 |
| 1.2 活性氧对植物的作用 | 第14-15页 |
| 1.2.1 活性氧的积极作用 | 第15页 |
| 1.2.2 活性氧对植物造成的氧化损伤 | 第15页 |
| 1.3 植物体对活性氧的清除 | 第15-18页 |
| 1.3.1 清除活性氧的酶促系统 | 第16-17页 |
| 1.3.2 清除活性氧的非酶促系统 | 第17-18页 |
| 二、抗坏血酸过氧化物酶及其研究进展 | 第18-21页 |
| 2.1 APX的细胞定位及其基因家族 | 第18-19页 |
| 2.2 APX酶学特征及功能研究 | 第19页 |
| 2.3 叶绿体APX的抗氧化功能 | 第19-20页 |
| 2.4 APX的催化机制 | 第20页 |
| 2.5 APX基因的研究进展 | 第20-21页 |
| 三、论文的目的及意义 | 第21-22页 |
| 第二部分 转基因杨树对非生物胁迫的抗性分析 | 第22-56页 |
| 一、实验材料 | 第22页 |
| 二、实验方法 | 第22-28页 |
| 1. 实验材料处理方法 | 第22-23页 |
| 1.1 盐胁迫处理 | 第22页 |
| 1.2 外源AsA处理 | 第22-23页 |
| 1.3 外源AsA+NaCl处理 | 第23页 |
| 1.4 外源H_2O_2处理 | 第23页 |
| 2. 生理指标的测定方法 | 第23-27页 |
| 2.1 酶活性的测定 | 第23-25页 |
| 2.2 AsA含量测定及活性氧含量测定 | 第25-26页 |
| 2.3 膜伤害程度测定 | 第26页 |
| 2.4 叶绿素含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.5 光合速率的测定 | 第27页 |
| 2.6 荧光参数的测定 | 第27页 |
| 2.7 H_2O_2的染色 | 第27页 |
| 2.8 Na~+、K~+离子含量的测定 | 第27页 |
| 3. 数据处理 | 第27-28页 |
| 三、结果与分析 | 第28-50页 |
| 1. 不同转基因毛白杨的表型差异分析 | 第28-29页 |
| 1.1 根的比较 | 第28页 |
| 1.2 生长周期的差异 | 第28-29页 |
| 2. 不同转基因毛白杨在盐胁迫下的反应 | 第29-38页 |
| 2.1 盐胁迫下不同转基因植株的表型差异 | 第29页 |
| 2.2 盐胁迫下不同转基因植株酶活性的变化 | 第29-31页 |
| 2.3 盐胁迫下不同转基因植株AsA含量的变化 | 第31-32页 |
| 2.4 盐胁迫下不同转基因植株H_2O_2含量的变化 | 第32-33页 |
| 2.5 盐胁迫下不同转基因植株MDA含量的变化 | 第33页 |
| 2.6 盐胁迫下不同转基因植株相对电导率的变化 | 第33-34页 |
| 2.7 盐胁迫下不同转基因植株最大光化学效率的变化 | 第34-35页 |
| 2.8 盐胁迫下不同转基因植株光合速率的变化 | 第35页 |
| 2.9 盐胁迫下不同转基因植株叶绿素含量的变化 | 第35-37页 |
| 2.10 盐胁迫下不同转基因植株离子含量的变化 | 第37-38页 |
| 3. 外源AsA处理对不同转基因毛白杨的影响 | 第38-41页 |
| 3.1 外源AsA处理对不同转基因植株APX酶活的影响 | 第38-39页 |
| 3.2 外源AsA处理对不同转基因植株GR酶活的影响 | 第39页 |
| 3.3 外源AsA处理对不同转基因植株SOD酶活的影响 | 第39-40页 |
| 3.4 外源AsA处理对不同转基因植株MDA含量的影响 | 第40页 |
| 3.5 外源AsA处理对不同转基因植株H_2O_2含量的影响 | 第40-41页 |
| 4. 盐胁迫下外源AsA对不同转基因毛白杨的影响 | 第41-46页 |
| 4.1 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株酶活性的影响 | 第41-42页 |
| 4.2 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株AsA含量的影响 | 第42页 |
| 4.3 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株H_2O_2含量的影响 | 第42-43页 |
| 4.4 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株MDA含量的影响 | 第43-44页 |
| 4.5 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株相对电导率的影响 | 第44页 |
| 4.6 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株最大光化学效率的影响 | 第44-45页 |
| 4.7 盐胁迫下外源AsA对不同转基因植株光合速率的影响 | 第45-46页 |
| 5. 不同转基因毛白杨在外源H_2O_2处理下的反应 | 第46-50页 |
| 5.1 外源H_2O_2处理下不同转基因植株的表型差异 | 第46-47页 |
| 5.2 外源H_2O_2处理下不同转基因植株APX酶活性的变化 | 第47页 |
| 5.3 外源H_2O_2处理下不同转基因植株GR酶活性的变化 | 第47-48页 |
| 5.4 外源H_2O_2处理不同转基因植株MDA含量和相对电导率的变化 | 第48-49页 |
| 5.5 外源H_2O_2处理下不同转基因植株光合速率和最大光化学效率的变化 | 第49-50页 |
| 5.6 外源H_2O_2处理下不同转基因植株总叶绿素含量的变化 | 第50页 |
| 四、讨论 | 第50-56页 |
| 1.1 环境胁迫与植物活性氧代谢 | 第50-51页 |
| 1.2 逆境胁迫下APX的作用 | 第51页 |
| 1.3 叶绿体APX与植物的抗逆性 | 第51-54页 |
| 1.4 叶绿体APX与植物的光破坏防御机制 | 第54-56页 |
| 第三部分 转基因杨树愈伤组织对盐胁迫的抗性分析 | 第56-63页 |
| 一、实验材料 | 第56页 |
| 二、实验方法 | 第56-57页 |
| 1. 胁迫处理方法 | 第56页 |
| 2. 生理指标的测定方法 | 第56-57页 |
| 2.1 APX酶活性的测定 | 第56-57页 |
| 2.2 GR酶活性的测定 | 第57页 |
| 2.3 MDA含量的测定 | 第57页 |
| 2.4 H_2O_2含量的测定 | 第57页 |
| 2.5 数据统计分析 | 第57页 |
| 三、结果与分析 | 第57-61页 |
| 1.光下培养的杨树愈伤组织在盐胁迫下的反应 | 第57-59页 |
| 1.1 盐胁迫对光下培养的不同转基因愈伤组织APX酶活性的影响 | 第57-58页 |
| 1.2 盐胁迫对光下培养的不同转基因愈伤组织GR酶活性的影响 | 第58页 |
| 1.3 盐胁迫对光下培养的不同转基因愈伤组织MDA含量的影响 | 第58-59页 |
| 1.4 盐胁迫对光下培养的不同转基因愈伤组织H_2O_2含量的影响 | 第59页 |
| 2. 黑暗下培养的杨树愈伤组织在盐胁迫下的反应 | 第59-61页 |
| 2.1 盐胁迫对黑暗下培养的不同转基因愈伤组织APX酶活性的影响 | 第59-60页 |
| 2.2 盐胁迫对黑暗下培养的不同转基因愈伤组织GR酶活性的影响 | 第60页 |
| 2.3 盐胁迫对黑暗下培养的不同转基因愈伤组织MDA含量的影响 | 第60-61页 |
| 2.4 盐胁迫对黑暗下培养的不同转基因愈伤组织H_2O_2含量的影响 | 第61页 |
| 四、讨论 | 第61-63页 |
| 第四部分 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
