摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-25页 |
·决明的研究进展 | 第12-15页 |
·决明的特性 | 第12-13页 |
·决明的药理活性 | 第13-14页 |
·决明在临床及生活中的应用 | 第14-15页 |
·植物组织培养技术在决明中的应用 | 第15-17页 |
·植物组织培养技术概述 | 第15-16页 |
·植物组织培养技术的应用 | 第16-17页 |
·植物遗传转化技术 | 第17-22页 |
·植物遗传转化技术概述 | 第17-18页 |
·毛状根的发生原理及其特征 | 第18-20页 |
·毛状根的培养方法 | 第20页 |
·毛状根的研究进展 | 第20-21页 |
·决明毛状根的研究进展 | 第21-22页 |
·抗氧化酶系统 | 第22-25页 |
·抗氧化系统概况 | 第22-23页 |
·抗氧化酶系统研究进展 | 第23-25页 |
第二章 引言 | 第25-27页 |
·研究目的与意义 | 第25-26页 |
·研究内容 | 第26-27页 |
第三章 浓硫酸处理对决明子发芽及幼苗生长的影响 | 第27-31页 |
·材料 | 第27页 |
·试验方法 | 第27页 |
·结果与分析 | 第27-30页 |
·不同处理时间对决明种子萌发的影响 | 第27-28页 |
·不同处理时间对生长状况的影响 | 第28-29页 |
·不同处理时间对株高和苗重的影响 | 第29-30页 |
·讨论 | 第30-31页 |
第四章 决明组培无性系的构建 | 第31-37页 |
·材料、试剂、仪器设备 | 第31页 |
·材料及试剂 | 第31页 |
·仪器设备 | 第31页 |
·试验方法 | 第31-32页 |
·无菌苗的获得 | 第31页 |
·愈伤组织诱导 | 第31页 |
·丛生芽培养及增殖 | 第31-32页 |
·分化芽生根陪养 | 第32页 |
·试管苗的移栽与定植 | 第32页 |
·结果与分析 | 第32-35页 |
·不同质量浓度6-BA和NAA组合对愈伤组织诱导培养的影响 | 第32-34页 |
·不同质量浓度6-BA和NAA组合对愈伤组织分化培养的影响 | 第34页 |
·不同质量浓度的NAA对分化芽生根培养的影响 | 第34-35页 |
·试管苗的移栽、定植 | 第35页 |
·讨论 | 第35-37页 |
第五章 决明毛状根结构研究 | 第37-44页 |
·材料、试剂、仪器设备 | 第37页 |
·材料及试剂 | 第37页 |
·仪器设备 | 第37页 |
·试验方法 | 第37-38页 |
·材料的制备 | 第37页 |
·决明毛状根外部形态观察 | 第37页 |
·制备毛状根及实生根永久装片——石蜡切片法 | 第37-38页 |
·结果与分析 | 第38-42页 |
·决明毛状根与实生根外部形态比较 | 第38-39页 |
·决明毛状根与实生根显微结构横切面比较 | 第39-40页 |
·决明毛状根与实生根显微结构纵切面比较 | 第40-41页 |
·决明毛状根与实生根淀粉粒分布情况 | 第41-42页 |
·结论与讨论 | 第42-44页 |
第六章 决明毛状根抗氧化酶系特征 | 第44-50页 |
·材料、试剂、仪器设备 | 第44页 |
·材料及试剂 | 第44页 |
·仪器设备 | 第44页 |
·试验方法 | 第44-47页 |
·抗氧化酶系统酶类样品提取 | 第44页 |
·超氧化歧化酶(SOD)活性测定 | 第44页 |
·过氧化氢酶(CAT)活性测定 | 第44-45页 |
·谷胱甘肽-过氧化物酶(GSH-PX)活性测定 | 第45页 |
·过氧化物酶(POD)活性测定 | 第45页 |
·O2-含量检测 | 第45-46页 |
·H_2O_2含量检测 | 第46页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)同工酶电泳 | 第46页 |
·过氧化物酶(POD)同工酶电泳 | 第46-47页 |
·结果与分析 | 第47-48页 |
·抗氧化酶体系的检测 | 第47页 |
·毛状根SOD同工酶 | 第47-48页 |
·毛状根POD同工酶 | 第48页 |
·讨论 | 第48-50页 |
第七章 结论 | 第50-51页 |
·确定了决明种子处理的最适条件 | 第50页 |
·得到了决明茎段、芽体、带芽茎段的组培无性系 | 第50页 |
·明晰了发根农杆菌诱导的决明毛状根与实生根之间的解剖差异 | 第50页 |
·了解了决明毛状根与实生根之间的抗氧化系统的差异 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
在校期间发表论文 | 第57页 |