| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一章 序言 | 第11-28页 |
| 1 文献综述 | 第11-25页 |
| ·家蚕是一种中国特色的模式动物 | 第11-13页 |
| ·家蚕作为模式生物的基本要素和特色优势 | 第11-12页 |
| ·以家蚕为模式动物研究生殖毒性的优势 | 第12-13页 |
| ·量子点 | 第13-16页 |
| ·量子点的特性 | 第14页 |
| ·量子点的制备方法 | 第14-15页 |
| ·量子点的表面修饰 | 第15-16页 |
| ·量子点在生命科学领域的应用 | 第16-21页 |
| ·量子点的生物体成像中的应用 | 第16-18页 |
| ·量子点在药物中的应用 | 第18-20页 |
| ·量子点在生物医学领域应用的潜在问题 | 第20-21页 |
| ·量子点的生物毒性 | 第21-25页 |
| ·量子点的生物毒性基本机制 | 第21-23页 |
| ·量子点的生殖毒性 | 第23-25页 |
| 2 研究目的与意义 | 第25-26页 |
| 3 主要研究内容 | 第26-27页 |
| 4 研究技术路线 | 第27-28页 |
| 第二章 碲化镉量子点对家蚕的生殖毒性及作用机制 | 第28-63页 |
| 1 试验材料与方法 | 第28-38页 |
| ·试验动物 | 第28页 |
| ·量子点 | 第28-29页 |
| ·试验试剂与试剂盒 | 第29-30页 |
| ·主要仪器设备 | 第30-31页 |
| ·家蚕背脉注射QDS | 第31页 |
| ·QDS进入家蚕生殖腺的特征性荧光观察 | 第31页 |
| ·组织HE切片制作与观察 | 第31-32页 |
| ·组织DAPI核染色 | 第32-33页 |
| ·造卵数、残余卵数、不受精卵数的调查 | 第33页 |
| ·体外生精囊培养 | 第33-35页 |
| ·组织溶酶体染色 | 第35页 |
| ·组织线粒体染色 | 第35页 |
| ·组织ROS水平调查 | 第35-36页 |
| ·组织总RNA的抽提 | 第36-37页 |
| ·总RNA的消化 | 第37页 |
| ·总RNA的反转录 | 第37页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第37-38页 |
| ·数据软件分析 | 第38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-59页 |
| ·背脉注射QDS后在家蚕生殖腺中的转移 | 第38-41页 |
| ·QDs进入雌雄家蚕生殖腺时间检测 | 第38-39页 |
| ·表面氨基酸修饰的QDs进入雌雄性腺的检测 | 第39-41页 |
| ·QDS对生殖腺细胞发育的影响 | 第41-44页 |
| ·QDs对生殖腺发育进程的影响 | 第42-43页 |
| ·QDs对生殖腺细胞核形态的直接影响 | 第43-44页 |
| ·QDS对产卵和受精的影响 | 第44-47页 |
| ·QDS对生精囊发育过程的影响 | 第47-52页 |
| ·QDS引起生殖腺细胞产生ROS | 第52-53页 |
| ·QDS引起生殖腺细胞发生凋亡 | 第53-56页 |
| ·QDs破坏生殖腺细胞线粒体结构 | 第53-55页 |
| ·QDs诱导生殖腺细胞凋亡相关基因的上调表达 | 第55-56页 |
| ·QDS引起生殖腺细胞发生自噬 | 第56-59页 |
| ·QDs破坏生殖腺细胞溶酶体结构 | 第56-58页 |
| ·QDs诱导生殖腺细胞自噬相关基因的上调表达 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-63页 |
| ·背脉注射QDS造成家蚕明显的生殖毒性 | 第59-60页 |
| ·QDS的生殖毒性存在性别差异 | 第60页 |
| ·表面氨基酸修饰具有降低毒性的效果 | 第60-61页 |
| ·QDS引起的生殖毒性是由细胞凋亡-自噬途径复合调控 | 第61-63页 |
| 第三章 结论、创新点与展望 | 第63-65页 |
| 1 全文结论 | 第63-64页 |
| 2 创新点 | 第64页 |
| 3 后续研究展望与建议 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-74页 |
| 发表论文与参与项目 | 第74-76页 |
| 附录 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |