| 导师评阅表 | 第1-6页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第6-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 研究内容与方法 | 第15-23页 |
| 1. 研究对象 | 第15页 |
| ·动物伦理 | 第15页 |
| ·入选标准 | 第15页 |
| ·排除标准 | 第15页 |
| ·样本含量的计算 | 第15页 |
| 2. 主要仪器及试剂 | 第15-16页 |
| ·主要仪器 | 第15页 |
| ·主要试剂 | 第15-16页 |
| 3. 实验方法 | 第16-21页 |
| ·分组 | 第16-17页 |
| ·平均肺动脉压力的测定 | 第17页 |
| ·腺病毒定位在缺氧性肺动脉高压新生大鼠肺组织判断 | 第17-18页 |
| ·肺血管重塑指标的检测 | 第18页 |
| ·肺组织HSP70、HIF-a、iNOS免疫组化 | 第18页 |
| ·石蜡切片的制作程序 | 第18-19页 |
| ·电镜观察标本的制作 | 第19页 |
| ·HE染色程序 | 第19-20页 |
| ·VG染色 | 第20页 |
| ·免疫组化 | 第20-21页 |
| 4. 质量控制 | 第21页 |
| ·肺动脉压检测过程中质量控制 | 第21页 |
| ·标本采集及病理染色过程中的质量控制 | 第21页 |
| ·实验数据统计分析过程中的质量控制 | 第21页 |
| 5. 统计学分析 | 第21-22页 |
| 6. 技术路线图 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-31页 |
| 1. 腺病毒在缺氧性肺动脉高压新生大鼠肺组织中的定位 | 第23页 |
| 2. 免疫组化法检测肺组织HSP70的表达及反应强度比较 | 第23-24页 |
| 3. 腺病毒介导HSP70缺氧性肺动脉高压新生大鼠肺动脉压力比较 | 第24-25页 |
| 4. 光学显微镜观察肺血管结构的变化 | 第25-26页 |
| 5. 电镜下新生大鼠肺动脉超微结构的变化 | 第26-27页 |
| 6. 肺动脉血管重塑指标比较 | 第27-28页 |
| 7. 腺病毒介导的HSP70转染至新生大鼠肺组织中HIF-1α、ET-1、iNOS的免疫组化表达强度比较 | 第28-31页 |
| ·HIF-1α的免疫组化表达强度比较 | 第28-29页 |
| ·ET-1 的免疫组化表达强度比较 | 第29页 |
| ·iNOS的免疫组化表达强度比较 | 第29-31页 |
| 讨论 | 第31-37页 |
| 1. 腺病毒介导的热休克蛋白70在缺氧性肺动脉高压新生大鼠肺组织中HSP70免疫强度的表达 | 第31-32页 |
| 2. 腺病毒介导的HSP70对缺氧性肺动脉高压新生大鼠肺动脉压力的影响 | 第32页 |
| 3. 腺病毒介导的HSP70对缺氧性肺动脉高压新生大鼠肺血管结构的影响 | 第32-33页 |
| 4. 腺病毒介导的HSP70对缺氧性肺动脉高压新生大鼠中HIF-1a的影响 | 第33-35页 |
| 5. 腺病毒介导的HSP70对缺氧性肺动脉高压新生大鼠HIF-1α下游靶基因（ET-1、iNOS）的影响 | 第35-36页 |
| 6. 本研究创新点 | 第36页 |
| 7. 本研究不足之处 | 第36页 |
| 8. 展望 | 第36-37页 |
| 小结 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| 综述 | 第44-53页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第53页 |
