| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-13页 |
| 中英文缩略词表 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 立题依据 | 第17-18页 |
| 实验研究 | 第18-61页 |
| 实验一 红景天苷诱导骨髓间充质干细胞向神经元样细胞分化 | 第18-31页 |
| 1 材料与方法 | 第18-19页 |
| ·实验材料 | 第18页 |
| ·实验仪器 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-25页 |
| ·D1 细胞的培养 | 第19页 |
| ·D1 细胞的诱导 | 第19页 |
| ·D1 细胞活力检测 | 第19页 |
| ·荧光免疫细胞化学染色 | 第19-20页 |
| ·实时定量PCR (real-time PCR)检测神经元标志分子基因的表达 | 第20-22页 |
| ·Western blot检测神经元标志分子蛋白的表达 | 第22-25页 |
| ·统计学分析 | 第25页 |
| 3 实验结果 | 第25-30页 |
| ·红景天苷对D1 细胞活力的影响 | 第25页 |
| ·细胞形态观察 | 第25-26页 |
| ·荧光免疫细胞化学染色结果 | 第26-27页 |
| ·红景天苷诱导D1 细胞后神经元标志基因的表达 | 第27-28页 |
| ·Western blot法检测神经元标志分子蛋白的表达 | 第28-30页 |
| 4 讨论 | 第30-31页 |
| 实验二 Ca~(2+)/CaM信号通路在红景天苷诱导骨髓间充质干细胞向神经元样细胞分化中的作用及分子机制 | 第31-41页 |
| 1 材料与方法 | 第31-32页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·实验仪器 | 第31页 |
| ·主要试剂 | 第31-32页 |
| 2 实验方法 | 第32-33页 |
| ·D1 细胞的培养 | 第32页 |
| ·激光共聚焦显微镜检测细胞内Ca~(2+)水平 | 第32-33页 |
| ·D1 细胞诱导后Ca~(2+)/CaM信号通路中关键蛋白的表达 | 第33页 |
| ·Ca~(2+)/CaM信号通路阻断后相关蛋白的表达 | 第33页 |
| ·Western blot检测 | 第33页 |
| ·统计学分析 | 第33页 |
| 3 结果 | 第33-38页 |
| ·红景天苷对细胞内Ca~(2+)水平的影响 | 第33-34页 |
| ·红景天苷对Ca~(2+)/CaM信号通路中关键蛋白CaM、CaMKⅡ表达的影响 | 第34-36页 |
| ·Ca~(2+)/CaM信号通路阻断后Ca~(2+)信号相关蛋白与神经元标志分子蛋白的表达 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-41页 |
| 实验三cAMP / Ca~(2+)信号通路在骨髓间充质干细胞向神经元样细胞分化中的作用 | 第41-61页 |
| 1 材料与方法 | 第42-43页 |
| ·实验材料 | 第42页 |
| ·实验仪器 | 第42-43页 |
| ·主要试剂 | 第43页 |
| 2 实验方法 | 第43-46页 |
| ·D1 细胞的培养 | 第43页 |
| ·D1 细胞的诱导 | 第43页 |
| ·细胞总RNA提取及纯化(RNeasy Mini Kit) | 第43-44页 |
| ·总RNA质量控制 | 第44页 |
| ·cDNA的合成（RT2 First Strand Kit） | 第44-45页 |
| ·Real-time PCR检测 | 第45页 |
| ·Western blot方法检测Ptgs-2、STAT3 的表达 | 第45-46页 |
| ·统计学分析 | 第46页 |
| 3 实验结果 | 第46-58页 |
| ·细胞总RNA提取、纯化质量的检测结果 | 第46-47页 |
| ·PCR Array检测结果 | 第47-58页 |
| ·Western blot检测Ptgs-2、STAT3 的表达 | 第58页 |
| 4 讨论 | 第58-61页 |
| 结语 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 文献综述 | 第66-79页 |
| 参考文献 | 第76-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 攻读硕士期间的工作内容与成果 | 第80-81页 |
