| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 第一部分 糖尿病创面与正常创面微小RNA差异表达谱分析 | 第11-26页 |
| 1 前言 | 第11页 |
| 2 材料和方法 | 第11-17页 |
| ·材料 | 第11-12页 |
| ·实验动物 | 第11-12页 |
| ·主要试剂 | 第12页 |
| ·主要仪器 | 第12页 |
| ·方法 | 第12-17页 |
| ·糖尿病大鼠模型的建立 | 第12-13页 |
| ·糖尿病大鼠与正常大鼠创面模型的建立 | 第13页 |
| ·样本采集 | 第13页 |
| ·提取组织中的总RNA | 第13-14页 |
| ·总RNA质量检查 | 第14页 |
| ·总RNA的分离纯化 | 第14页 |
| ·微小RNA的荧光标记和芯片杂交 | 第14-15页 |
| ·杂交芯片的清洗、扫描和芯片数据提取 | 第15页 |
| ·芯片数据处理 | 第15页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR验证芯片结果 | 第15-17页 |
| ·差异表达微小RNA功能富集分析 | 第17页 |
| 3 结果 | 第17-24页 |
| ·糖尿病大鼠成模情况 | 第17页 |
| ·总RNA质检结果 | 第17-18页 |
| ·微小RNA芯片检测结果 | 第18-20页 |
| ·实时定量RT-PCR检测结果 | 第20-21页 |
| ·差异表达微小RNA功能富集分析结果 | 第21-24页 |
| 4 讨论 | 第24-26页 |
| 第二部分 重组人粒细胞巨噬细胞集落刺激因子对糖尿病大鼠创面愈合及微小RNA表达的影响 | 第26-37页 |
| 1 前言 | 第26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-30页 |
| ·材料 | 第26-28页 |
| ·实验动物 | 第26-27页 |
| ·主要试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器 | 第27-28页 |
| ·方法 | 第28-30页 |
| ·糖尿病大鼠模型的建立 | 第28页 |
| ·糖尿病大鼠创面模型的建立 | 第28页 |
| ·观测指标及评价方法 | 第28-29页 |
| ·微小RNA差异表达检测及验证 | 第29-30页 |
| ·统计学处理 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-35页 |
| ·糖尿病大鼠成模情况 | 第30页 |
| ·创面愈合情况 | 第30-31页 |
| ·组织病理学观察 | 第31页 |
| ·创面CD31和PCNA抗体表达 | 第31-32页 |
| ·微小RNA差异表达检测结果及验证 | 第32-35页 |
| ·总RNA抽提及质检 | 第32页 |
| ·微小RNA芯片检测结果 | 第32-34页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR检测 | 第34页 |
| ·KEGG信号通路功能富集分析 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-37页 |
| 全文结论 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 附图 | 第42-50页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-63页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |