中英文缩略词 | 第1-7页 |
中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
第一章 前言 | 第11-13页 |
第二章 材料与方法 | 第13-21页 |
·材料 | 第13-15页 |
·实验动物 | 第13页 |
·主要试剂及耗材 | 第13页 |
·试剂配方 | 第13-14页 |
·主要仪器 | 第14-15页 |
·方法 | 第15-20页 |
·动物模型的建立及手术方法 | 第15-16页 |
·建立选择性损伤耳蜗螺旋神经节细胞的动物模型 | 第15页 |
·BDNF对损伤的SGNs的保护作用的实验动物的分组及手术方法 | 第15-16页 |
·耳蜗病理切片制作步骤 | 第16-18页 |
·耳蜗石蜡包埋的制备 | 第16-17页 |
·石蜡切片的制备 | 第17页 |
·HE染色法 | 第17-18页 |
·光镜下细胞密度的测量-细胞形态检测方法 | 第18页 |
·耳蜗透射电镜切片制作步骤 | 第18-20页 |
·包埋切片样品的制作过程 | 第18-19页 |
·超薄切片的制作 | 第19页 |
·超薄切片的染色 | 第19-20页 |
·透射电镜观察 | 第20页 |
·统计学处理 | 第20-21页 |
第三章 结果 | 第21-33页 |
·光学显微镜结果 | 第21-28页 |
·各组蒙古沙鼠SGNs石蜡HE染色结果 | 第21-22页 |
·耳蜗螺旋神经节细胞密度的测量 | 第22-28页 |
·空白组、损伤组及保护组Rosenthal管区SGNs密度的比较 | 第22-26页 |
·空白组、损伤组及保护组的不同Rosenthal管区SGNs密度的比较 | 第26-28页 |
·透射电镜结果 | 第28-33页 |
·SGNs形态 | 第28-29页 |
·空白组、损伤组及保护组神经纤维细胞的形态比较 | 第29-30页 |
·空白组、损伤组及保护组SGNs髓鞘的形态比较 | 第30-31页 |
·空白组、损伤组及保护组SGNs胞质的比较 | 第31-33页 |
第四章 讨论 | 第33-41页 |
·选择性耳蜗螺旋神经节神经元损伤模型的建立 | 第33-35页 |
·哇巴因选择性损伤耳蜗SGNs | 第33-34页 |
·哇巴因对SGNs造成损伤及相关机制 | 第34-35页 |
·BDNF对损伤后SGNs的保护作用 | 第35-41页 |
·BDNF对SGNs保护的作用部位 | 第35-36页 |
·BDNF对SGNs的保护作用及相关机制 | 第36-41页 |
·BDNF对损伤后SGNs细胞信号转导通路的影响 | 第37-38页 |
·BDNF损伤后SGNs保护的可能机制 | 第38-41页 |
第五章 结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-45页 |
综述 | 第45-53页 |
参考文献 | 第49-53页 |
发表文章目录 | 第53-54页 |
致谢 | 第54页 |