| 缩略词表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-33页 |
| ·磷脂简介 | 第13-23页 |
| ·磷脂的分类 | 第13-14页 |
| ·磷脂的合成 | 第14-15页 |
| ·磷脂的分解 | 第15-16页 |
| ·磷脂的代谢 | 第16页 |
| ·磷脂的生理功能 | 第16-17页 |
| ·磷脂的质谱分析方法 | 第17-23页 |
| ·2 型糖尿病与磷脂代谢的相关性研究 | 第23-25页 |
| ·2 型糖尿病动物模型研究进展 | 第25-30页 |
| ·实验性糖尿病动物模型 | 第26-27页 |
| ·自发性糖尿病动物模型 | 第27-30页 |
| ·转基因和基因敲除糖尿病动物模型 | 第30页 |
| ·化学计量学在磷脂组学中的应用 | 第30-31页 |
| ·无监督模式识别方法 | 第31页 |
| ·有监督模式识别方法 | 第31页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第31-33页 |
| 第二章 UPLC/Q-TOF MS 分析大鼠血浆中磷脂类成分 | 第33-56页 |
| ·磷脂的结构简介 | 第33-36页 |
| ·实验材料 | 第36-37页 |
| ·主要实验药品及试剂 | 第36页 |
| ·主要仪器和设备 | 第36页 |
| ·大鼠血浆中磷脂提取物的制备： | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-49页 |
| ·溶液的制备 | 第37页 |
| ·方法学考察 | 第37-40页 |
| ·UPLC/Q-TOF MS 分析 | 第40-42页 |
| ·标准品裂解规律 | 第42-49页 |
| ·实验结果 | 第49-55页 |
| ·本章小结 | 第55-56页 |
| 第三章 格列美脲干预大鼠 T2DM 的药效评价及血浆 UPLC/Q-TOF MS 分析 | 第56-78页 |
| ·引言 | 第56页 |
| ·实验材料 | 第56-59页 |
| ·实验试剂 | 第56-57页 |
| ·主要仪器和设备 | 第57-58页 |
| ·实验动物 | 第58页 |
| ·试剂的配制 | 第58-59页 |
| ·实验方法 | 第59-61页 |
| ·2 型糖尿病大鼠模型的建立 | 第59页 |
| ·格列美脲对 T2DM 大鼠的干预 | 第59-60页 |
| ·观测指标及检测方法 | 第60-61页 |
| ·统计学方法 | 第61页 |
| ·造模实验结果及分析 | 第61-70页 |
| ·空白组（NC）与模型组（DM）摄食量、饮水量的测量 | 第61-62页 |
| ·体重变化 | 第62-63页 |
| ·成模结果及其分析 | 第63-67页 |
| ·格列美脲干预实验结果及分析 | 第67-70页 |
| ·UPLC/Q-TOF MS 分析 | 第70-76页 |
| ·本章小结 | 第76-78页 |
| 第四章 化学计量学分析 | 第78-122页 |
| ·引言 | 第78页 |
| ·数据预处理 | 第78-87页 |
| ·数据导出 | 第79页 |
| ·标度法的选择 | 第79-87页 |
| ·数据分析及讨论 | 第87-106页 |
| ·无监督模式识别方法对样品的分型 | 第87-94页 |
| ·有监督模式识别方法对样品的分型 | 第94-106页 |
| ·SBBS 方法筛选生物标志物 | 第106-111页 |
| ·磷脂质谱数据与血清生化指标的相关性 | 第111-119页 |
| ·磷脂代谢与 2 型糖尿病的关系及生物学解释 | 第119-120页 |
| ·本章小结 | 第120-122页 |
| 第五章 结论、创新点与展望 | 第122-124页 |
| ·研究成果 | 第122-123页 |
| ·大鼠血浆磷脂类物质的成分分析 | 第122页 |
| ·T2DM 大鼠模型的复制及格列美脲的药效评价 | 第122页 |
| ·T2DM 大鼠模型及其药物干预的磷脂研究 | 第122-123页 |
| ·创新性 | 第123页 |
| ·展望 | 第123-124页 |
| 参考文献 | 第124-134页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第134-135页 |
| 致谢 | 第135页 |
