| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-18页 |
| ·研究背景 | 第10-16页 |
| ·Cyt b_6f 的组成及结构 | 第10-12页 |
| ·光合作用中 Chl a 分子与光保护机制 | 第12-14页 |
| ·Cyt b_6f 中 Chl a 分子光保护机制的研究进展 | 第14-15页 |
| ·本研究对 Cyt b_6f 中 Chl a 分子光保护机制的提出 | 第15-16页 |
| ·本课题的研究内容与意义 | 第16-18页 |
| ·研究内容 | 第16-17页 |
| ·研究意义 | 第17-18页 |
| 第2章 集胞藻 6803 petBD 必需基因定点突变株的构建 | 第18-32页 |
| ·引言 | 第18-19页 |
| ·材料与仪器 | 第19-21页 |
| ·实验材料与培养条件 | 第19页 |
| ·试剂与工具酶 | 第19页 |
| ·培养基与常用溶液配制 | 第19-21页 |
| ·实验用到的仪器设备 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-27页 |
| ·同源重组载体的构建 | 第21-22页 |
| ·定点突变体系 | 第22-23页 |
| ·定点突变体系扩增条件 | 第23-24页 |
| ·质粒的提取与浓缩 | 第24页 |
| ·集胞藻 6803 的自然转化方法 | 第24-25页 |
| ·突变株的鉴定 | 第25-26页 |
| ·突变株的纯化、保存及扩大培养 | 第26-27页 |
| ·结果 | 第27-30页 |
| ·同源重组载 pUC-petBD 的构建 | 第27页 |
| ·定点突变质粒的构建 | 第27-28页 |
| ·集胞藻 6803 的转化和 Kanr突变株的筛选 | 第28-29页 |
| ·定点突变株的验证 | 第29-30页 |
| ·讨论 | 第30-31页 |
| ·本章小结 | 第31-32页 |
| 第3章 集胞藻 6803 中 Cyt b_6f 的分离纯化 | 第32-50页 |
| ·引言 | 第32页 |
| ·材料与仪器 | 第32-38页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验试剂 | 第32页 |
| ·所用溶液的配制 | 第32-37页 |
| ·主要仪器 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·集胞藻 6803Cyt b_6f 蛋白样品的制备 | 第38-40页 |
| ·Cyt b_6f 样品的 SDS-PAGE 分析 | 第40-41页 |
| ·Cyt b_6f 样品的吸收全谱 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-46页 |
| ·野生集胞藻 6803Cyt b_6f 样品的提纯 | 第41-43页 |
| ·集胞藻 6803 突变体 Cyt b_6f 样品的提纯 | 第43-46页 |
| ·讨论 | 第46-49页 |
| ·去垢剂在膜蛋白分离纯化中的重要作用 | 第46-47页 |
| ·传统的分离纯化方法的运用 | 第47页 |
| ·疏水层析与离子交换层析交互运用 | 第47-48页 |
| ·蔗糖密度梯度离心 | 第48-49页 |
| ·本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 氨基酸定点突变对 Cyt b_6f 蛋白复合体中 Chl a 光稳定性的影响 | 第50-58页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·材料与仪器 | 第50页 |
| ·实验材料 | 第50页 |
| ·实验仪器 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·吸收光谱的测定 | 第50-51页 |
| ·Chl a 的光破坏处理 | 第51页 |
| ·时间分辨荧光光谱的测定 | 第51-52页 |
| ·结果 | 第52-54页 |
| ·Cyt b_6f 制剂的吸收光谱 | 第52页 |
| ·Chl a 光破坏的研究 | 第52-54页 |
| ·时间分辨荧光光谱 | 第54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| ·本章小结 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 攻读硕士学位期间所发表的论文 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
