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人野生型Mst1基因抑制肿瘤生长的实验研究

摘要第1-5页
ABSTRACT第5-12页
第1章 引言第12-15页
第2章 人野生型 Mst1 基因真核表达载体的构建及鉴定第15-24页
 1 材料第15-17页
   ·菌株第15页
   ·质粒载体第15页
   ·PCR 引物第15-16页
   ·主要试剂第16页
   ·主要仪器第16-17页
 2 方法第17-22页
   ·溶液配制第17-18页
   ·技术路线第18页
   ·PCR 及其产物纯化第18-19页
   ·双酶切第19-20页
   ·酶连第20页
   ·转化第20-21页
   ·菌落 PCR第21页
   ·DNA 测序第21-22页
   ·质粒 DNA 的大量制备、纯化和定量第22页
 3 结果第22-23页
   ·Mst1 基因的 PCR 产物及 pEGFP-N1 载体的双酶切结果第22页
   ·重组过表达载体的鉴定第22-23页
   ·质粒 DNA 的定量结果第23页
 4 小结第23-24页
第3章 高表达 Mst1 基因对人肝癌细胞 HepG2 作用的体外实验研究第24-47页
 1 材料第24-26页
   ·细胞第24页
   ·主要仪器第24-25页
   ·主要试剂第25-26页
 2 方法第26-35页
   ·溶液配制第26-28页
   ·细胞培养第28-29页
   ·转染第29页
   ·流式细胞术检测 HepG2 细胞凋亡率第29-30页
   ·MTT 比色法检测 HepG2 细胞增殖活性第30页
   ·Hoechst 33342 染色观察 HepG2 细胞凋亡形态第30-31页
   ·RT-qPCR 分析 HepG2 细胞中 Mst1、CTGF、AREG、Survivin mRNA的表达第31-33页
   ·Western blotting 分析 HepG2 细胞中 MST1、YAP1、Phospho-YAP(Ser127)、Caspase-3 的表达第33-35页
   ·统计学处理第35页
 3 结果第35-41页
   ·荧光显微镜观察转染情况第35页
   ·高表达 Mst1 基因对 HepG2 细胞增殖与凋亡的影响第35-38页
   ·高表达 Mst1 基因对 YAP 的磷酸化及 CTGF、AREG 和 SurvivinmRNA 表达的影响第38-39页
   ·MST1 的表达与活化与 DDP 诱导的细胞死亡的关系第39-41页
 4 讨论第41-47页
   ·MST1 的促细胞凋亡作用第42-45页
   ·MST1 与肿瘤细胞 DDP 化疗的关系第45-47页
第4章 高表达 Mst1 基因对人 NSCLC 生长影响的实验研究第47-58页
 1 材料第47-48页
   ·细胞第47页
   ·动物第47页
   ·主要仪器第47页
   ·主要试剂第47-48页
 2 方法第48-51页
   ·A549 细胞的培养及裸鼠的饲养第48页
   ·转染第48页
   ·流式细胞术、Hoechst 33342 染色检测 A549 细胞凋亡情况第48-49页
   ·RT-PCR 分析 A549 细胞中 Mst1、CTGF、AREG、Survivin mRNA的表达第49页
   ·Western blotting 分析 A549 细胞中 MST1、YAP1、Phospho-YAP (Ser127)的表达第49-50页
   ·模拟 Mst1 基因治疗裸鼠移植瘤实验第50页
   ·免疫组织化学分析肿瘤 YAP 及 Phospho-YAP(Ser127)蛋白表达第50-51页
   ·统计学处理第51页
 3 结果第51-56页
   ·荧光显微镜观察转染情况第51页
   ·高表达 Mst1 基因对 A549 体外细胞生长的影响第51-53页
   ·高表达 Mst1 基因对 A549 细胞中 YAP 的磷酸化及 CTGF、AREG 和 Survivin mRNA 表达的影响第53-54页
   ·模拟 Mst1 基因治疗裸鼠移植瘤的实验结果第54-55页
   ·免疫组织化学分析移植瘤 YAP 及 Phospho-YAP(Ser127) 蛋白第55-56页
 4 讨论第56-58页
第5章 结论与展望第58-59页
 1 结论第58页
 2 进一步工作的方向第58-59页
致谢第59-60页
参考文献第60-65页
附图第65-76页
攻读学位期间的研究成果第76-77页
综述第77-88页
 参考文献第85-88页

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