| 英文词汇缩略表 | 第1-7页 |
| 第一部分 Notch信号通路在内侧颞叶癫痫中的激活 | 第7-49页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 癫痫概述 | 第9页 |
| ·癫痫定义 | 第9页 |
| ·癫痫发作 | 第9页 |
| ·癫痫分类 | 第9页 |
| 第二章 内侧颞叶癫痫 | 第9-13页 |
| ·内侧颞叶癫痫概述 | 第9-10页 |
| ·内侧颞叶癫痫的研究进展 | 第10-13页 |
| ·发病假说 | 第10-11页 |
| ·发病机制 | 第11-13页 |
| 第三章 Notch信号通路与MTLE的研究 | 第13-17页 |
| ·Notch受体 | 第13页 |
| ·Notch配体 | 第13-14页 |
| ·Notch信号通路 | 第14-15页 |
| ·Notch信号通路与中枢神经系统 | 第15-16页 |
| ·Notch信号通路与MTLE的研究 | 第16-17页 |
| 第四章 科学问题和技术路线 | 第17-20页 |
| ·科学问题 | 第17页 |
| ·工作假说 | 第17-18页 |
| ·研究策略 | 第18-19页 |
| ·技术方法 | 第19页 |
| ·研究目标 | 第19-20页 |
| 第五章 材料与方法 | 第20-34页 |
| ·立体定向海马微量注射海人酸构建内侧颞叶癫痫小鼠模型 | 第20-22页 |
| ·临床样本的收集 | 第22-24页 |
| ·MTLE患者及模型小鼠海马组织的western blot、免疫组化和荧光 | 第24-31页 |
| ·小鼠海马内电极-加药模型的建立 | 第31-33页 |
| ·激活或抑制Notch信号通路及录像脑电图监测 | 第33-34页 |
| 第六章 研究结果 | 第34-44页 |
| ·单侧海马注射KA诱导的MTLE小鼠模型 | 第34-36页 |
| ·MTLE小鼠模型中Notch信号通路的激活 | 第36-37页 |
| ·慢性期MTLE小鼠模型海马中NICD1、Notch1和Jagged1的表达分布 | 第37-39页 |
| ·急性期和潜伏期NICD 1在注射侧海马中的表达分布 | 第39页 |
| ·MTLE患者海马组织中Notch信号通路的激活 | 第39-40页 |
| ·尸检时间对小鼠海马中NICD1表达量的影响 | 第40-41页 |
| ·急性期MTLE小鼠模型中激活Notch信号通路的促癫痫发作作用 | 第41-43页 |
| ·急性期MTLE小鼠模型中抑制Notch信号通路的抗癫痫发作作用 | 第43-44页 |
| 第七章 讨论 | 第44-48页 |
| ·海马内注射KA构建的MTLE小鼠模型 | 第44-45页 |
| ·小鼠海马内电极-加药模型 | 第45-46页 |
| ·MTLE中Notch信号通路的激活 | 第46-47页 |
| ·Notch信号通路可能作用于癫痫持续发作 | 第47-48页 |
| ·癫痫中Notch信号通路的可能角色 | 第48页 |
| 第八章 小结 | 第48-49页 |
| 第二部分 生长相关蛋白-43在内侧颞叶癫痫小鼠模型海马中的表达变化 | 第49-60页 |
| 中文摘要 | 第49-50页 |
| Abstract | 第50-51页 |
| 第一章 引言 | 第51页 |
| 第二章 科学问题与技术路线 | 第51-53页 |
| ·科学问题 | 第51页 |
| ·科学假说 | 第51-52页 |
| ·研究策略 | 第52页 |
| ·技术方法 | 第52-53页 |
| ·研究目标 | 第53页 |
| 第三章 材料与方法 | 第53页 |
| ·动物和试剂 | 第53页 |
| ·动物模型的建立 | 第53页 |
| ·免疫组化检测及western blot | 第53页 |
| 第四章 结果 | 第53-57页 |
| ·GAP-43在颞叶癫痫发生不同时期的空间分布 | 第53-54页 |
| ·p-GAP43蛋白水平在癫痫发生的潜伏期与慢性期的齿状回颗粒细胞中显著下调 | 第54-57页 |
| 第五章 讨论 | 第57-59页 |
| ·GAP-43在MTLE发生中可能的作用机制 | 第57-58页 |
| ·p-GAP-43的蛋白水平在MTLE潜伏期与慢性期的齿状回颗粒细胞中的显著下调 | 第58-59页 |
| 第六章 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 简历 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
