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瘤胃兼性厌氧纤维素降解菌的筛选与纤维素降解复合菌系的构建

致谢第1-5页
目录第5-8页
摘要第8-9页
1 文献综述第9-22页
   ·瘤胃及其纤维素分解菌第9-10页
   ·国内外研究进展第10-13页
   ·天然纤维素成分和结构第13-15页
   ·纤维素酶学性质与酶解机理第15-17页
     ·纤维素酶学性质第15-16页
       ·内切‐β‐1,4‐葡聚糖酶(endo‐β‐1,4‐glucanase,EG)第15-16页
       ·外切‐β‐1,4‐葡聚糖酶(exo‐β‐1,4‐glucanase,CBH)第16页
       ·β‐1,4‐葡萄糖苷酶(β‐1,4‐glucosidase,BG)第16页
     ·纤维素酶解机理第16-17页
   ·分解纤维素相关酶系的测定方法第17-19页
     ·纤维素酶溶解活性第17-18页
       ·浊度法第17-18页
       ·透明圈法第18页
       ·失重法第18页
     ·糖化活性第18页
       ·滤纸酶活性第18页
       ·棉花酶活性第18页
     ·纤维素酶各组分酶活力的测定第18-19页
       ·CBH 酶活力第18-19页
       ·EG 酶活力第19页
       ·BG 酶活力第19页
   ·选育纤维素降解菌的方法第19-20页
   ·纤维素酶的应用价值第20-21页
   ·纤维素分解菌的研究展望第21-22页
2 引言第22-23页
3 材料与方法第23-34页
   ·材料第23-24页
   ·培养基及缓冲液的制备第24-25页
   ·实验方法第25-34页
     ·实验的技术路线第25-26页
     ·纤维素分解菌的分离、筛选第26-27页
     ·细菌的鉴定第27-29页
       ·菌株形态学特征第27页
       ·PCR 扩增 16S rDNA 序列鉴定第27-29页
     ·构建细菌进化树第29页
     ·细菌生长特性的测定第29页
     ·发酵产酶第29页
     ·酶活测定方法第29-31页
       ·DNS 配制方法第29-30页
       ·葡萄糖标准曲线的制作第30页
       ·粗酶液的制备第30-31页
       ·酶活测定方法第31页
     ·CMC‐Na 含量测定第31-33页
       ·CMC‐Na 标准曲线的绘制第32页
       ·CMC‐Na 含量测定第32-33页
     ·细菌对滤纸条的降解作用第33页
     ·混合菌系对纤维素的降解作用第33-34页
       ·混合菌系的构建第33页
       ·混合菌系培养液中 CMC‐Na 含量测定第33页
       ·混合菌系对滤纸的降解作用第33页
       ·混合菌系的优化第33-34页
4 结果第34-47页
   ·纤维素降解菌的筛选第34-35页
   ·菌种的鉴定第35-38页
   ·菌种的生长特性第38-39页
   ·菌种的产酶情况第39-40页
   ·菌种对纤维素的降解第40-47页
5 结论与讨论第47-48页
   ·结论第47页
   ·讨论第47-48页
参考文献第48-53页
Abstract第53页

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