| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 缩略词表 | 第9-14页 |
| 第一部分 文献综述与选题依据 | 第14-44页 |
| 1 治疗性血管再生的研究进展 | 第14-21页 |
| ·血管再生的过程 | 第14页 |
| ·血管再生的分子机制 | 第14-18页 |
| ·治疗性血管再生 | 第18-21页 |
| 2 影响骨折愈合的因素 | 第21-24页 |
| ·手术选择的固定方式与骨折愈合 | 第21-22页 |
| ·骨折局部因素与骨折愈合 | 第22-23页 |
| ·术后功能锻炼 | 第23-24页 |
| ·全身因素 | 第24页 |
| 3 治疗性血管再生与骨修复 | 第24-28页 |
| ·骨的血液供应 | 第24-25页 |
| ·骨折愈合及其影响因素 | 第25-28页 |
| 4 微动对骨折愈合的影响研究进展 | 第28-35页 |
| ·微动与骨折愈合研究进展 | 第28-30页 |
| ·微动促进骨折愈合的机制 | 第30-32页 |
| ·应力-应变促进成骨分化的力学信号传导机制 | 第32-35页 |
| 5 骨髓干细胞 | 第35-37页 |
| ·骨髓间充质干细胞 | 第36页 |
| ·骨髓造血干细胞 | 第36页 |
| ·骨髓内皮祖细胞 | 第36-37页 |
| 6 干细胞动员与骨骼损伤修复 | 第37-41页 |
| ·骨髓干细胞动员与损伤修复 | 第37-41页 |
| ·骨损伤修复与血管再生 | 第41页 |
| ·干细胞动员与骨损伤的血管再生 | 第41页 |
| 7 选题依据 | 第41-44页 |
| 第二部分 大鼠闭合性骨折模型建立和机械振动协同RHG-CSF动员对骨折愈合影响的组织学研究 | 第44-54页 |
| 1 材料与方法 | 第44-48页 |
| ·实验动物喂养及分组 | 第44页 |
| ·实验仪器设备和主要试剂 | 第44-45页 |
| ·大鼠股骨闭合性骨折模型的建立 | 第45-46页 |
| ·干细胞动员剂rhG-CSF给药方式和剂量选择 | 第46页 |
| ·机械振动方案选择 | 第46-47页 |
| ·脱钙骨组织样本取材、固定、包埋及制片方法 | 第47页 |
| ·图像采集,数据统计与分析 | 第47-48页 |
| 2 实验结果 | 第48-51页 |
| ·模型成功率 | 第48页 |
| ·X线片结果 | 第48页 |
| ·大鼠骨折恢复期的行为观察及体重变化 | 第48-49页 |
| ·大鼠骨折部位的骨组织显微结构观察 | 第49-51页 |
| 3 分析与讨论 | 第51-52页 |
| ·机械振动协同rhG-CSF动员对骨折大鼠恢复期的行为观察与体重变化分析 | 第51页 |
| ·X光片观察结果分析 | 第51-52页 |
| ·骨组织学变化分析 | 第52页 |
| 4 小结 | 第52-54页 |
| 第三部分 机械振动协同RHG-CSF动员对大鼠骨折愈合过程中CD34、VEGF、ANG-1、FⅧ-RAG、CD31表达的免疫组化研究 | 第54-62页 |
| 1 材料与方法 | 第54-55页 |
| ·实验动物分组 | 第54页 |
| ·实验仪器设备与主要试剂 | 第54页 |
| ·脱钙骨组织样本取材、固定、包埋及制片方法 #41同第二部分脱钙骨组织样本取材、固定、包埋及制片方法 | 第54页 |
| ·免疫组织化学实验方法 | 第54-55页 |
| ·图像采集与数据统计 | 第55页 |
| 2 实验结果 | 第55-57页 |
| ·骨折部位CD34的免疫组化检测结果 | 第55页 |
| ·骨折部位VEGF的免疫组化检测结果 | 第55-56页 |
| ·骨折部位Ang-1的免疫组化检测结果 | 第56页 |
| ·骨折部位FⅧ-Rag的免疫组化检测结果 | 第56页 |
| ·骨折部位CD31的免疫组化检测结果 | 第56-57页 |
| 3 分析与讨论 | 第57-60页 |
| ·机械振动协同rhG-CSF动员对骨折大鼠CD34+表达的影响 | 第57-58页 |
| ·机械振动协同rhG-CSF动员对骨折大鼠VEGF的影响 | 第58-59页 |
| ·机械振动协同rhG-CSF动员对骨折大鼠Ang-1表达的影响 | 第59页 |
| ·机械振动协同rhG-CSF动员对骨折大鼠FⅧ-Rag和CD31的影响 | 第59-60页 |
| 4 小结 | 第60-62页 |
| 第四部分 机械振动协同RHG-CSF动员对骨折大鼠骨痂组织ANG-1和VEGF蛋白表达的免疫印迹研究 | 第62-74页 |
| 1 材料与方法 | 第62-64页 |
| ·实验动物及分组 | 第62页 |
| ·主要仪器设备、试剂 | 第62-63页 |
| ·取材及样品保存 | 第63页 |
| ·骨组织蛋白提取 | 第63页 |
| ·蛋白定量 | 第63-64页 |
| ·蛋白变性 | 第64页 |
| ·SDS-PAGE凝胶电泳检测 | 第64页 |
| 2 WESTERN BLOT方法检测蛋白表达 | 第64-66页 |
| ·凝胶电泳 | 第64-65页 |
| ·转膜 | 第65页 |
| ·封闭 | 第65页 |
| ·抗体孵育 | 第65-66页 |
| ·化学发光、显影、定影 | 第66页 |
| ·图像采集与数据统计 | 第66页 |
| 3 实验结果 | 第66-72页 |
| ·蛋白定量数据 | 第66-67页 |
| ·标准蛋白曲线 | 第67页 |
| ·电泳结果 | 第67-68页 |
| ·Western blot实验结果 | 第68-72页 |
| 4 小结 | 第72-74页 |
| 全文总结 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-96页 |
| 附录 | 第96-124页 |
| 致谢 | 第124-126页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第126页 |
