| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 本文缩略词及中英文对照 | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-19页 |
| 1 冷害 | 第12页 |
| 2 冷害生理生化机制 | 第12-15页 |
| ·冷害对细胞膜的影响 | 第13页 |
| ·冷害与乙烯响应的关系 | 第13页 |
| ·冷害与蛋白质的关系 | 第13-14页 |
| ·冷害对活性氧的影响 | 第14页 |
| ·冷害对果实基因表达的影响 | 第14-15页 |
| 3 NO 及其衍生物 N_2O 研究进展 | 第15-17页 |
| ·对生理品质及酶活性的影响 | 第15-16页 |
| ·对乙烯合成的影响 | 第16页 |
| ·对呼吸作用的影响 | 第16页 |
| ·对冷害的影响 | 第16-17页 |
| 4 香气代谢研究 | 第17页 |
| 5 本文立题依据及研究内容 | 第17-19页 |
| ·本文立题依据 | 第17-18页 |
| ·本文研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 NO 和 N_2O 对香蕉果实采后抗氧化相关酶的影响 | 第19-39页 |
| 1 前言 | 第19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-30页 |
| ·材料与处理 | 第19-20页 |
| ·主要仪器 | 第20-21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·冷害症状观察 | 第21-22页 |
| ·细胞膜透性和 MDA 含量 | 第22页 |
| ·过氧化氢酶活性测定 | 第22页 |
| ·抗坏血酸过氧化物酶活性测定 | 第22-23页 |
| ·过氧化物酶活性测定 | 第23页 |
| ·超氧化物歧化酶活性测定 | 第23页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第23-24页 |
| ·超氧自由基阴离子(O~2-·)产生速率测定 | 第24页 |
| ·实时荧光定量 PCR 分析 | 第24-30页 |
| ·香蕉组织总 RNA 的提取 | 第24-25页 |
| ·总 RNA 浓度的测定及完整性检测 | 第25页 |
| ·RNA 的消化和纯化 | 第25-26页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第26页 |
| ·实时定量荧光 qPCR 的引物设计 | 第26-27页 |
| ·实时定量荧光 qPCR 检测条件的优化 | 第27-28页 |
| ·qRCR 反应条件和数据分析 | 第28-29页 |
| ·目的基因标准曲线制备 | 第29-30页 |
| ·目的基因的实时荧光定量 qPCR | 第30页 |
| ·Actin 基因标准曲线的制备 | 第30页 |
| ·实时荧光定量 qPCR 分析 | 第30页 |
| ·数据分析 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-36页 |
| ·总 RNA 提取 | 第30-31页 |
| ·荧光表达的标准曲线和溶解曲线 | 第31页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对香蕉果实冷害指数的影响 | 第31-32页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对细胞膜透性和 MDA 含量变化的影响 | 第32页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 CAT 酶活性及其相关基因表达的影响 | 第32-33页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 APX 活性及 MaAPX 基因表达的影响 | 第33-34页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 POD 活性及 MaPOD 基因表达的影响 | 第34-35页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 SOD 活性及 MaSOD 基因表达的影响 | 第35页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 H2O2含量的影响 | 第35-36页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 O2-·产生速率的影响 | 第36页 |
| 4 讨论与小结 | 第36-39页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| ·小结 | 第38-39页 |
| 第三章 NO 和 N_2O 对香蕉果实采后逆境相关酶的影响 | 第39-46页 |
| 1 引言 | 第39页 |
| 2 材料与方法 | 第39-41页 |
| ·材料及处理 | 第39页 |
| ·主要仪器 | 第39-40页 |
| ·主要试剂 | 第40页 |
| ·脂氧合酶活性测定 | 第40页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶活性测定 | 第40-41页 |
| ·多酚氧化酶活性测定 | 第41页 |
| ·总 RNA 提取、测定和 CDNA 第一链的合成 | 第41页 |
| ·实时荧光定量 QPCR 分析 | 第41页 |
| ·数据分析 | 第41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-43页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 LOX 酶活性及 MaLOX 基因表达的影响 | 第41-42页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 PAL 酶活性及相关基因表达的影响 | 第42-43页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 PPO 酶活性及基因表达的影响 | 第43页 |
| 4 讨论与小结 | 第43-46页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 第四章 NO 和 N_2O 对香蕉果实采后乙烯合成相关酶及信号传导相关基因表达的影响 | 第46-54页 |
| 1 前言 | 第46页 |
| 2 材料与方法 | 第46-49页 |
| ·材料及处理 | 第46-47页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47页 |
| ·ACC 氧化酶活性测定 | 第47页 |
| ·ACC 合成酶活性测定 | 第47-48页 |
| ·总 RNA 提取、测定和 CDNA 第一链的合成 | 第48页 |
| ·实时荧光定量 QPCR 分析 | 第48页 |
| ·乙烯受体及乙烯信号传导基因的表达 QPCR 分析 | 第48-49页 |
| ·数据分析 | 第49页 |
| 3 结果与分析 | 第49-52页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 ACC 氧化酶活性及其基因表达的影响 | 第49页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对 ACC 合成酶活性及其基因表达的影响 | 第49-50页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对香蕉乙烯受体 MaEIL 基因家族表达的影响 | 第50-51页 |
| ·NO 和 N_2O 处理对香蕉乙烯受体 MaERS 基因家族表达的影响 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 第五章 NO 对香蕉采后冷诱导香气成分变化的影响 | 第54-67页 |
| 1 引言 | 第54页 |
| 2 材料与方法 | 第54-57页 |
| ·材料与处理 | 第54-55页 |
| ·主要仪器 | 第55页 |
| ·主要试剂 | 第55页 |
| ·香蕉成熟分级标准 | 第55页 |
| ·香蕉挥发性物质的测定 | 第55-57页 |
| ·顶空固相微萃取 | 第55-56页 |
| ·香蕉挥发性物质的定性分析 | 第56页 |
| ·香蕉挥发性物质的定量分析 | 第56-57页 |
| ·总 RNA 提取、测定和 CDNA 第一链的合成 | 第57页 |
| ·实时荧光定量 QPCR 分析 | 第57页 |
| ·数据分析 | 第57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-65页 |
| ·后熟过程中香蕉挥发性物质的组成变化 | 第57-62页 |
| ·绿硬阶段香蕉挥发性物质的特点 | 第57-58页 |
| ·黄熟阶段香蕉挥发性物质的特点 | 第58-60页 |
| ·过熟阶段香蕉挥发性物质的特点 | 第60-62页 |
| ·NO 对香蕉香气成分醛类及代谢相关基因的影响 | 第62页 |
| ·NO 对香蕉香气成分醇类及代谢相关基因的影响 | 第62-63页 |
| ·NO 对香蕉香气成分酯类及代谢相关基因的影响 | 第63-64页 |
| ·NO 对香蕉采后其它香气代谢相关基因的影响 | 第64-65页 |
| 4 讨论 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 附录 | 第77-87页 |
| 硕士在读期间发表论文情况 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
