| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述：植物呼肠孤病毒的生物学和分子生物学 | 第14-48页 |
| 1．1 斐济病毒属 | 第15-25页 |
| 1．1．1 种类、分布、症状、介体及经济意义 | 第15-18页 |
| 1．1．1．1 FDV | 第16页 |
| 1．1．1．2 RBSDV、MRDV、MRCV、PaSV | 第16-17页 |
| 1．1．1．2．1 RBSDV | 第16-17页 |
| 1．1．1．2．2 MRDV和MRCV | 第17页 |
| 1．1．1．2．3 PaSV | 第17页 |
| 1．1．1．3 OSDV | 第17页 |
| 1．1．1．4 GDV | 第17页 |
| 1．1．1．5 NLRV | 第17-18页 |
| 1．1．2 斐济病毒粒子 | 第18-19页 |
| 1．1．2．1 粒子形态 | 第18-19页 |
| 1．1．2．2 粒子特性 | 第19页 |
| 1．1．2．3 病毒粒子在宿主植物和介体飞虱体内的分布 | 第19页 |
| 1．1．3 结构蛋白 | 第19-21页 |
| 1．1．3．1 FDV | 第20页 |
| 1．1．3．2 MRDV | 第20-21页 |
| 1．1．3．3 RBSDV | 第21页 |
| 1．1．3．4 NLRV | 第21页 |
| 1．1．4 基因组 | 第21-25页 |
| 1．1．4．1 斐济病毒基因组结构特点 | 第22-24页 |
| 1．1．4．2 斐济病毒属的分子分类 | 第24-25页 |
| 1．1．4．3 基因组研究与病毒检测 | 第25页 |
| 1．2 植物呼肠孤病毒属 | 第25-38页 |
| 1．2．1 种类、分布、症状、介体及经济意义 | 第25-28页 |
| 1．2．1．1 RDV | 第26-27页 |
| 1．2．1．2 WTV | 第27页 |
| 1．2．1．3 RGDV | 第27页 |
| 1．2．1．4 RBSV和TLEV | 第27-28页 |
| 1．2．2 植物呼肠孤病毒属病毒粒子 | 第28-29页 |
| 1．2．2．1 粒子形态 | 第28页 |
| 1．2．2．2 粒子特性 | 第28页 |
| 1．2．2．3 病毒粒子在宿主植物和介体叶蝉体内的定位 | 第28-29页 |
| 1．2．3 基因组 | 第29-31页 |
| 1．2．4 病毒蛋白及其功能 | 第31-38页 |
| 1．2．4．1 结构蛋白 | 第31-36页 |
| 1．2．4．1．1 RDV外壳蛋白P8和P2 | 第33-34页 |
| 1．2．4．1．2 RDV核心粒子结构蛋白 | 第34-36页 |
| 1．2．4．2 非结构蛋白 | 第36-38页 |
| 1．3 稻属 | 第38-42页 |
| 1．3．1 症状及其它生物学特性 | 第38-39页 |
| 1．3．1．1 RRSV和ERSV | 第38页 |
| 1．3．1．2 水稻植物呼肠孤病毒的区分 | 第38-39页 |
| 1．3．2 病毒粒子 | 第39-40页 |
| 1．3．2．1 粒子形态 | 第39页 |
| 1．3．2．2 粒子特性 | 第39-40页 |
| 1．3．3 结构蛋白 | 第40页 |
| 1．3．4 基因组 | 第40-42页 |
| 1．4 植物呼肠孤病毒的侵染、转录、表达、复制和组装 | 第42-44页 |
| 1．5 本项目的研究背景和目的 | 第44-48页 |
| 第二章 材料和方法 | 第48-58页 |
| 2．1 试剂和仪器 | 第48-49页 |
| 2．1．1 试剂 | 第48页 |
| 2．1．2 仪器 | 第48-49页 |
| 2．2 材料 | 第49页 |
| 2．3 菌株和质粒 | 第49页 |
| 2．4 细菌培养 | 第49页 |
| 2．5 质粒的少量提纯 | 第49-50页 |
| 2．5．1 试剂 | 第49-50页 |
| 2．5．2 步骤 | 第50页 |
| 2．6 核酸纯化 | 第50-51页 |
| 2．6．1 透析袋电洗脱法 | 第50-51页 |
| 2．6．2 低熔点琼脂糖凝胶法 | 第51页 |
| 2．6．3 用试剂盒纯化 | 第51页 |
| 2．7 连接反应 | 第51-52页 |
| 2．7．1 DNA片段与T-Vector的连接反应 | 第51-52页 |
| 2．7．2 RNA片段与寡核苷酸DNA片段间连接反应 | 第52页 |
| 2．7．2．1 RNA变性 | 第52页 |
| 2．7．2．2 RNA与寡核苷酸DNA片段的连接反应 | 第52页 |
| 2．8 RT-PCR | 第52-53页 |
| 2．8．1 cDNA合成 | 第52-53页 |
| 2．8．2 PCR | 第53页 |
| 2．9 感受态细胞制备及转化 | 第53-54页 |
| 2．9．1 感受态细胞的制备 | 第53-54页 |
| 2．9．2 转化和筛选 | 第54页 |
| 2．10 DNA序列测定及分析 | 第54页 |
| 2．11 RBSDV提取方法 | 第54-55页 |
| 2．12 电子显微镜技术 | 第55页 |
| 2．13 抗血清制备 | 第55页 |
| 2．14 ELISA | 第55-56页 |
| 2．14．1 试剂 | 第55-56页 |
| 2．14．2 步骤 | 第56页 |
| 2．15 病毒基因组提纯 | 第56-57页 |
| 2．15．1 从纯化的病毒中提取 | 第56页 |
| 2．15．2 从病叶中直接提取病毒基因组 | 第56-57页 |
| 2．15．3 病毒基因组中DNA和单链RNA杂质的去除 | 第57页 |
| 2．16 介体L．Striatellus获毒和病毒传播实验 | 第57-58页 |
| 第三章 我国不同地区发生的玉米粗缩病、小麦绿矮病和水稻黑条矮缩病都是由水稻黑条矮缩病毒引起的 | 第58-66页 |
| 3．1 引言 | 第59-60页 |
| 3．2 材料与方法 | 第60-62页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第62-66页 |
| 3．3．1 3 个病毒分离物的特性暗示3种分离物可能是同一种病毒 | 第62-65页 |
| 3．3．2 病毒传播实验表明浙江分离物和河北分离物可能是同一种病毒 | 第65页 |
| 3．3．3 基因组片段S10部分序列分析表明3个中国病毒分离物都是水稻里条矮缩病毒 | 第65-66页 |
| 第四章 水稻黑条矮缩病毒基因组变异及系统进化分析 | 第66-101页 |
| 4．1 引言 | 第68页 |
| 4．2 材料与方法 | 第68-70页 |
| 4．3 结果 | 第70-95页 |
| 4．3．1 基因组片段S10 | 第70-78页 |
| 4．3．2 基因组片段S9 | 第78-84页 |
| 4．3．3 基因组片段S8 | 第84-89页 |
| 4．3．4 基因组片段S7 | 第89-95页 |
| 4．4 讨论 | 第95-101页 |
| 4．4．1 基因组末端序列 | 第95-96页 |
| 4．4．2 RBSDV之间的变异 | 第96-97页 |
| 4．4．3 RBSDV S7～10编码的蛋白质 | 第97-98页 |
| 4．4．4 系统进化 | 第98-101页 |
| 第五章 水稻黑条矮缩病毒基因组的分子特性 | 第101-128页 |
| 5．1 引言 | 第102-103页 |
| 5．2 材料与方法 | 第103-105页 |
| 5．3 结果 | 第105-125页 |
| 5．3．1 基因组片段S1 | 第106-110页 |
| 5．3．2 基因组片段S2 | 第110-114页 |
| 5．3．3 基因组片段S3 | 第114-118页 |
| 5．3．4 基因组片段S4 | 第118-120页 |
| 5．3．5 基因组片段S5和S6 | 第120-125页 |
| 5．4 讨论 | 第125-128页 |
| 第六章 主要结论与进一步研究的建议 | 第128-130页 |
| 6．1 主要结论 | 第128-129页 |
| 6．2 进一步研究的建议 | 第129-130页 |
| 第七章 参考文献 | 第130-152页 |
| 表目录 | 第152-154页 |
| LIST OF TABLES | 第154-156页 |
| 图目录 | 第156-158页 |
| LIST OF FIGURES | 第158-161页 |
| 博士期间代表性论文 | 第161-162页 |
| 致谢 | 第162页 |
