| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-14页 |
| 英文缩略表 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-33页 |
| ·猪呼吸系统疾病与肺免疫防御 | 第15-21页 |
| ·猪呼吸系统疾病及其危害 | 第15-17页 |
| ·控制猪呼吸系统疾病的一般措施 | 第17-18页 |
| ·呼吸系统免疫防御功能的研究 | 第18-19页 |
| ·肺免疫防御功能与猪呼吸系统疾病的关系 | 第19-20页 |
| ·肺免疫防御相关基因 | 第20-21页 |
| ·SP-A 研究现状 | 第21-28页 |
| ·SP-A的分子结构 | 第21-22页 |
| ·SP-A的分子遗传学 | 第22-24页 |
| ·SP-A的合成和代谢 | 第24页 |
| ·SP-A的局部防御和免疫调节作用 | 第24-26页 |
| ·SP-A的表达调控 | 第26-27页 |
| ·SP-A在人类临床医学中的研究 | 第27-28页 |
| ·猪油酸－急性肺损伤模型 | 第28-31页 |
| ·急性肺损伤 | 第28-29页 |
| ·SP-A与急性肺损伤 | 第29-30页 |
| ·油酸－急性肺损伤模型 | 第30-31页 |
| ·研究目的与内容 | 第31-33页 |
| ·研究目的 | 第31-32页 |
| ·研究内容 | 第32-33页 |
| 第二章 猪SP-A cDNA的克隆与分析 | 第33-52页 |
| ·导言 | 第33页 |
| ·主要仪器和材料 | 第33-34页 |
| ·主要仪器 | 第33页 |
| ·材料 | 第33-34页 |
| ·方法 | 第34-42页 |
| ·肺组织的采集与保存 | 第34-35页 |
| ·总RNA的提取 | 第35页 |
| ·总RNA的纯化 | 第35-36页 |
| ·总RNA的检测 | 第36页 |
| ·3’RACE | 第36-39页 |
| ·5’RACE | 第39-41页 |
| ·RT-PCR | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-48页 |
| ·总RNA检测结果 | 第42页 |
| ·3’RACE，5’RACE和RT-PCR 扩增和克隆结果 | 第42-43页 |
| ·测得序列拼接与分析 | 第43-48页 |
| ·讨论 | 第48-52页 |
| ·RACE技术心得 | 第48-50页 |
| ·猪SP-A的特征与功能 | 第50-52页 |
| 第三章 猪SP-A DNA的克隆与分析 | 第52-61页 |
| ·导言 | 第52页 |
| ·主要仪器和材料 | 第52-55页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| ·材料 | 第52-55页 |
| ·方法 | 第55-57页 |
| ·猪基因组DNA的提取与检测 | 第55页 |
| ·猪SP-A基因的PCR扩增 | 第55-56页 |
| ·纯化、克隆及测序 | 第56页 |
| ·序列分析 | 第56-57页 |
| ·结果与分析 | 第57-59页 |
| ·基因组DNA检测结果 | 第57页 |
| ·PCR 扩增和克隆结果 | 第57-58页 |
| ·测得序列拼接与分析 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-61页 |
| ·基因组DNA的制备 | 第59页 |
| ·猪SP-A DNA的序列特征与功能 | 第59-61页 |
| 第四章 猪SP-A多态性检测与关联性分析 | 第61-77页 |
| ·导言 | 第61页 |
| ·主要仪器和材料 | 第61-64页 |
| ·主要仪器 | 第61-62页 |
| ·材料 | 第62-64页 |
| ·方法 | 第64-68页 |
| ·猪基因DNA的提取与检测 | 第64页 |
| ·PCR–SSCP | 第64-66页 |
| ·纯化测序 | 第66页 |
| ·统计分析 | 第66-68页 |
| ·结果与分析 | 第68-74页 |
| ·SP-A多态性检测结果 | 第68-72页 |
| ·统计分析结果 | 第72-74页 |
| ·讨论 | 第74-77页 |
| ·PCR-SSCP技术 | 第74-75页 |
| ·不同SP-A单体型与PRD发病率－肺免疫防御能力的关系 | 第75-77页 |
| 第五章 猪油酸－急性肺损伤模型的建立 | 第77-86页 |
| ·导言 | 第77页 |
| ·主要仪器和材料 | 第77页 |
| ·主要仪器 | 第77页 |
| ·材料 | 第77页 |
| ·方法 | 第77-80页 |
| ·不同油酸注射剂量的比较 | 第77-78页 |
| ·不同处死方式的分析比较 | 第78页 |
| ·建立油酸组和对照组 | 第78-80页 |
| ·结果与分析 | 第80-84页 |
| ·油酸注射剂量的确定和呼吸频率的变化 | 第80页 |
| ·猪处死方式的选择 | 第80-81页 |
| ·油酸组和对照组实验结果 | 第81-84页 |
| ·讨论 | 第84-86页 |
| ·试验对象的选择 | 第84页 |
| ·猪油酸－急性肺损伤模型的建立 | 第84-86页 |
| 第六章 SP-A m RNA表达量和蛋白含量的检测 | 第86-106页 |
| ·导言 | 第86页 |
| ·主要仪器设备和材料 | 第86-88页 |
| ·主要仪器设备 | 第86-87页 |
| ·主要材料 | 第87-88页 |
| ·方法 | 第88-94页 |
| ·荧光定量PCR检测SP-A mRNA表达量 | 第88-90页 |
| ·Western blot检测SP-A蛋白的含量 | 第90-94页 |
| ·数据处理和统计分析 | 第94页 |
| ·结果与分析 | 第94-102页 |
| ·荧光定量PCR结果 | 第94-97页 |
| ·Western blot结果 | 第97-98页 |
| ·数据处理和统计分析结果 | 第98-102页 |
| ·讨论 | 第102-106页 |
| ·FQ-PCR技术 | 第102页 |
| ·Western blot技术 | 第102-103页 |
| ·血清中SP-A的检测 | 第103页 |
| ·肺含水量的变化与肺损伤程度 | 第103-104页 |
| ·肺组织中SP-A m RNA表达量的变化与肺损伤程度 | 第104-105页 |
| ·BALF中SP-A含量的变化与肺损伤程度 | 第105页 |
| ·SP-A mRNA表达量、SP-A含量与肺损伤程度之间的关系 | 第105-106页 |
| 第七章 全文结论 | 第106-108页 |
| ·猪SP-A具有肺免疫防御功能 | 第106页 |
| ·不同SP-A单体型猪具有不同的肺免疫防御功能 | 第106页 |
| ·肺组织中猪SP-A的表达量和BALF中猪SP-A的含量与肺免疫防御功能有关 | 第106页 |
| ·展望 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 作者简历 | 第120页 |
