猪MX1基因在气道上皮细胞SIV感染过程中的表达
| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-27页 |
| ·猪的抗病育种 | 第11-15页 |
| ·猪的育种趋势 | 第11页 |
| ·抗病育种 | 第11-14页 |
| ·抗病育种面临的困难与前景展望 | 第14-15页 |
| ·猪流感病毒研究进展 | 第15-18页 |
| ·SIV的生物学特性 | 第15页 |
| ·SIV分子生物学特性 | 第15-18页 |
| ·抗病性状相关基因 | 第18-20页 |
| ·NRAMP1基因 | 第18-19页 |
| ·干扰素基因 | 第19页 |
| ·MHC(主要组织相容性复合体) | 第19-20页 |
| ·ETEC K88受体基因 | 第20页 |
| ·其他基因 | 第20页 |
| ·拟研究的基因MX1基因 | 第20-24页 |
| ·MX1的发现 | 第20-21页 |
| ·MX1结构与功能 | 第21-24页 |
| ·Mx1的应用与前景 | 第24页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第24-26页 |
| ·本研究目的与意义 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-37页 |
| ·实验材料 | 第27-29页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·主要实验仪器 | 第27页 |
| ·克隆载体和菌株 | 第27-28页 |
| ·主要药品 | 第28页 |
| ·主要试剂配置 | 第28-29页 |
| ·主要生物学软件 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-37页 |
| ·气道上皮细胞的体外培养 | 第29-30页 |
| ·间接免疫荧光法鉴定细胞感染情况 | 第30-31页 |
| ·细胞攻毒条件的确定 | 第31页 |
| ·细胞攻毒 | 第31页 |
| ·细胞总RNA的提取与质量检测 | 第31-32页 |
| ·定性与定量检测 | 第32-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-50页 |
| ·气道上皮细胞培养体系的建立 | 第37-38页 |
| ·细胞的分离与培养 | 第37-38页 |
| ·传代培养 | 第38页 |
| ·生长曲线 | 第38页 |
| ·细胞感染后间接免疫荧光检测 | 第38-39页 |
| ·细胞 RNA的提取与质量检测 | 第39页 |
| ·Mx1的扩增与鉴定 | 第39-41页 |
| ·细胞攻毒后表达检测 | 第41-50页 |
| ·标准曲线的制作 | 第42页 |
| ·干扰素最佳诱导浓度的结果 | 第42-45页 |
| ·干扰素最佳诱导时间的结果 | 第45-47页 |
| ·SIV感染过程中的Mx1表达情况 | 第47-50页 |
| 4 讨论 | 第50-55页 |
| ·气道上皮细胞的体外培养 | 第50-51页 |
| ·取材 | 第50页 |
| ·消化方法 | 第50页 |
| ·培养液 | 第50-51页 |
| ·感染后细胞免疫荧光检测 | 第51页 |
| ·实时荧光定量 PCR检测 | 第51-53页 |
| ·引物设计 | 第51-52页 |
| ·实验操作注意事项 | 第52页 |
| ·荧光检测条件的优化 | 第52-53页 |
| ·Mx1诱导与表达情况 | 第53-55页 |
| ·干扰素诱导浓度对Mx1表达的影响 | 第53页 |
| ·干扰素诱导时间对Mx1表达的影响 | 第53页 |
| ·SIV感染过程中的Mx1表达情况 | 第53-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 硕士期间发表的文章 | 第63页 |
