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Hedgehog信号转导分子在体外诱导大鼠基质干细胞成骨和成骨细胞过程中作用的研究

摘要第1-10页
Abstract第10-13页
符号说明第13-14页
主要仪器与药品第14-17页
综述第17-22页
 1.BMSCs 的生物学特性第17-18页
 2.BMSCs 的分离、培养第18-19页
   ·BMSCs 的分离第18页
   ·BMSCs 的培养第18-19页
 3.BMSCs 定向分化为软骨细胞和成骨细胞第19-20页
     ·BMSCs 定向分化为软骨细胞第19页
     ·BMSCs 定向分化为成骨细胞第19-20页
 4.Hedgehog 信号通路第20-21页
 5.小结第21-22页
实验研究第22-50页
 第一部分 大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及初步鉴定第22-28页
  前言第22页
  1、实验前的准备工作第22-23页
   ·使用器械及玻璃制品的灭菌第22页
   ·培养用液的配制第22-23页
  2、实验材料和实验方法第23-24页
   ·实验动物第23页
   ·实验方法第23-24页
     ·骨髓间充质干细胞的分离第23页
     ·骨髓间充质干细胞的原代和传代培养第23-24页
     ·骨髓间充质干细胞的鉴定第24页
       ·细胞形态学观察第24页
       ·流式细胞术检测第24页
  3、实验结果第24-26页
   ·骨髓间充质干细胞的形态学观察第24-25页
   ·流式细胞术检测第25-26页
  4、讨论第26-28页
 第二部分 Hedgehog 信号分子在骨髓间充质干细胞分化为成骨细胞中的作用第28-41页
  前言第28页
  1、诱导大鼠BMSCs 向成骨细胞分化第28-29页
   ·配制实验诱导试剂第28-29页
   ·诱导细胞分化第29页
  2.BMSCs 分化为成骨细胞过程中I 型胶原、SHH 及IHH 的检测第29-33页
   ·免疫细胞化学检测I 型胶原的表达第29-30页
     ·细胞爬片培养第29页
     ·细胞固定第29页
     ·细胞破膜第29页
     ·阻断内源性酶的活性第29页
     ·封闭处理第29页
     ·一抗处理第29页
     ·免疫组织化学试剂盒处理第29-30页
     ·DAB 显色第30页
     ·复染和封片第30页
     ·显微照相第30页
   ·Western Blotting 检测SHH 及IHH 的表达第30-32页
     ·溶液的配制第30页
     ·提取培养细胞的总蛋白第30-31页
     ·灌制SDS-PAGE 凝胶第31页
     ·蛋白样品电泳第31页
     ·转膜第31-32页
     ·抗体孵育第32页
     ·显色第32页
     ·照相并分析第32页
   ·RT-PCR 检测Shh 及Ihh 的表达第32-33页
     ·提取总RNA第32页
     ·第一链cDNA 的合成第32页
     ·PCR 反应第32-33页
  3、主要观察指标第33页
  4、统计学分析第33页
  5、实验结果第33-39页
   ·BMSCs 诱导成成骨细胞的形态变化第33-34页
   ·Ⅰ型胶原的免疫组化表达情况第34-35页
   ·SHH 蛋白和IHH 蛋白在诱导BMSCs 成成骨细胞过程中的表达第35-37页
   ·Shh 和Ihh 在BMSCs 诱导成成骨细胞过程中的基因表达第37-39页
  6、讨论第39-41页
 第三部分 Hedgehog 信号分子在骨髓间充质干细胞分化为软骨细胞中的作用第41-50页
  前言第41页
  1、诱导大鼠BMSCs 向软骨细胞分化第41-42页
   ·配制实验诱导试剂第41-42页
   ·诱导细胞分化第42页
  2.BMSCs 分化为软骨细胞过程中I 型胶原、SHH 及IHH 的检测第42页
   ·免疫细胞化学检测Ⅱ型胶原的表达第42页
   ·Western Blotting 检测SHH 及IHH 的表达第42页
   ·RT-PCR 检测Shh 及Ihh 的表达第42页
  3、主要观测指标第42页
  4、统计学分析第42-43页
  5、实验结果第43-48页
   ·BMSCs 诱导成软骨细胞时的形态变化第43页
   ·Ⅱ型胶原的免疫组化表达情况第43-44页
   ·SHH 蛋白和IHH 蛋白在BMSCs 诱导成软骨细胞过程中的表达第44-46页
   ·Shh 和Ihh 在BMSCs 诱导成软骨细胞过程中的基因表达第46-48页
  6、讨论第48-50页
小结第50-51页
参考文献第51-57页
致谢第57-58页
攻读学位期间发表的学术论著第58页

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