| 图表目录 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 技术路线 | 第14-15页 |
| 1 引言 | 第15-19页 |
| 2 实验材料 | 第19-27页 |
| ·菌株 | 第19页 |
| ·载体 | 第19-20页 |
| ·细胞株 | 第20页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| ·细菌培养基 | 第20-21页 |
| ·细胞培养基 | 第21-22页 |
| ·主要试剂 | 第22-25页 |
| ·试剂盒 | 第25页 |
| ·抗体 | 第25页 |
| ·实验仪器及设备 | 第25-27页 |
| 3 实验方法 | 第27-44页 |
| ·大肠杆菌的转化 | 第27-28页 |
| ·碱裂解法小量提取质粒 | 第28-29页 |
| ·DNA的酶切修饰 | 第29页 |
| ·细胞培养 | 第29页 |
| ·细胞或动物组织总RNA的提取 | 第29-30页 |
| ·病毒DNA的提取 | 第30页 |
| ·重组腺病毒Ad-mELC的构建 | 第30-32页 |
| ·重组腺病毒的鉴定 | 第32-37页 |
| ·重组腺病毒的扩增、纯化和滴度测定 | 第37-39页 |
| ·酶联免疫吸附实验 | 第39页 |
| ·鉴定缓释脂质体PEG-liposome | 第39-40页 |
| ·实验动物模型的建立及Ad-mELC联合脂质体的肿瘤基因治疗 | 第40-42页 |
| ·组织切片HE染色及腹水瑞氏染色 | 第42-43页 |
| ·统计分析 | 第43-44页 |
| 4 实验结果 | 第44-64页 |
| ·重组腺病毒Ad-mELC的构建 | 第44-47页 |
| ·重组腺病毒Ad-mELC的体外活性研究 | 第47-50页 |
| ·PEG缓释脂质体的性质研究 | 第50-52页 |
| ·Ad-mELC/PEG混合物对肿瘤细胞增殖活性的影响 | 第52-53页 |
| ·小鼠生存期观察 | 第53-55页 |
| ·肿瘤再接种实验 | 第55-56页 |
| ·小鼠腹水体积、肿瘤细胞数和红细胞数检测 | 第56-59页 |
| ·mELC和VEGF的体内表达研究 | 第59-61页 |
| ·对小鼠腹膜渗透性的影响 | 第61页 |
| ·腹水中的mELC、INF-Y和IL12体内表达研究 | 第61-64页 |
| 5 讨论 | 第64-68页 |
| 6 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 综述 | 第74-93页 |
| 在读期间发表论著 | 第93页 |
| 在读期间参加课题目录 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
