| 独创性声明 | 第1页 |
| 论文使用授权的说明 | 第4-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-19页 |
| 1 蛋白质组学研究的内涵 | 第11-12页 |
| 2 植物体细胞胚胎发生研究的意义 | 第12-13页 |
| 3 植物体细胞胚胎发生相关特异蛋白研究 | 第13-17页 |
| 4 植物体细胞胚胎发生相关基因的表达研究 | 第17页 |
| 5 本研究的背景和主要研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 龙眼体细胞胚胎发生及其同步化调控 | 第19-21页 |
| 1 材料与方法 | 第19页 |
| ·材料 | 第19页 |
| ·方法 | 第19页 |
| 2 结果与分析 | 第19-21页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织的继代保持 | 第19-20页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织的胚胎发生与同步化材料的获得 | 第20页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织保持和胚胎发生培养应注意的问题 | 第20-21页 |
| 第三章 龙眼体胚发生过程中特异表达蛋白的双向电泳分析 | 第21-29页 |
| 1 材料与方法 | 第21-22页 |
| ·材料 | 第21页 |
| ·方法 | 第21-22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-28页 |
| ·龙眼体胚发生过程中不同发育阶段的双向电泳 | 第22-25页 |
| ·龙眼体胚发生过程中不同发育阶段的特异表达蛋白分析 | 第25-28页 |
| 3 小结 | 第28-29页 |
| 第四章 龙眼体胚发生过程中特异表达小分子多肽的分离纯化与鉴定 | 第29-38页 |
| 1 材料与方法 | 第29-33页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·方法 | 第30-33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-38页 |
| ·龙眼各个发育阶段体细胞胚胎的总蛋白SDS-PAGE | 第33-35页 |
| ·SDS-PAGE分离纯化小分子多肽 | 第35页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE分离纯化小分子多肽 | 第35-37页 |
| ·MALDI-TOF质谱做肽质量指纹图谱鉴定 | 第37页 |
| ·电喷雾串连质谱(ESI-MS/MS)鉴定 | 第37-38页 |
| 第五章 龙眼胚性愈伤组织ATP合成酶亚基8基因(atp8)的cDNA克隆 | 第38-46页 |
| 1 材料与方法 | 第39页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·方法 | 第39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-46页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织的RNA提取与纯度鉴定 | 第39-40页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织atp8cDNA克隆与序列分析 | 第40-46页 |
| 第六章 龙眼胚性愈伤组织、子叶胚和成熟胚中atp8基因表达量的比较 | 第46-49页 |
| 1 材料与方法 | 第46-47页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-49页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织、子叶胚和成熟胚的RNA提取 | 第47页 |
| ·龙眼胚性愈伤组织、子叶胚和成熟胚中atp8基因表达量比较 | 第47-49页 |
| 第七章 影响龙眼体胚小肽表达的因素 | 第49-54页 |
| 1 材料与方法 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·方法 | 第49-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-54页 |
| ·渗透压对龙眼体胚发生过程中小肽表达的影响 | 第50-53页 |
| ·成熟培养时间对龙眼体胚发生过程中小肽表达的影响 | 第53-54页 |
| 第八章 讨论 | 第54-59页 |
| 1 龙眼体胚发育过程中特异蛋白的表达 | 第54页 |
| 2 龙眼成熟胚中特异小分子多肽的鉴定 | 第54-58页 |
| ·小分子多肽的质谱鉴定 | 第54-56页 |
| ·基因克隆鉴定小分子多肽 | 第56-57页 |
| ·关于小分子多肽的功能的推测 | 第57页 |
| ·对小分子多肽的研究前景的展望 | 第57-58页 |
| 3 龙眼体胚蛋白分离纯化方法的改进 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 缩写词 | 第63-64页 |
| 附录1 | 第64-65页 |
| 附录2 | 第65-67页 |
| 附录3 | 第67-74页 |
| 附录4 | 第74-75页 |
| 附录5 | 第75-76页 |
| 附录6 | 第76-79页 |
| 图版 | 第79-80页 |
| 图版说明 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
