中文摘要 | 第1-7页 |
英文摘要 | 第7-9页 |
第一章 前言 | 第9-17页 |
1.1 高分子材料表面改性的方法 | 第9页 |
1.2 光偶联方法的原理及特点 | 第9-12页 |
1.3 光偶联方法在高分子材料表面改性中的应用 | 第12-16页 |
1.3.1 光偶联法改善高分子材料表面润滑性、润湿性 | 第12-13页 |
1.3.1.1 提高高分子材料表面润滑性 | 第12页 |
1.3.1.2 改善高分子材料表面润湿性 | 第12-13页 |
1.3.2 光偶联法改善医用高分子材料血液相容性 | 第13-14页 |
1.3.3 光偶联法改善医用高分子材料的抗菌性 | 第14-15页 |
1.3.4 光偶联法在制造生物传感器、生物反应器中的应用 | 第15页 |
1.3.5 光偶联法用于医用高分子材料表面结构的分子设计 | 第15-16页 |
1.4 小结 | 第16-17页 |
第二章 脲酶在PET膜表面的光固定 | 第17-31页 |
2.1 前言 | 第17-18页 |
2.2 实验部分 | 第18-22页 |
2.2.1 试剂和仪器 | 第18-19页 |
2.2.1.1 试剂 | 第18-19页 |
2.2.1.2 仪器 | 第19页 |
2.2.2 有机中间体的合成 | 第19-20页 |
2.2.2.1 对叠氮基苯甲酸的合成 | 第19页 |
2.2.2.2 氮羟基琥珀酰亚胺(NHS)的合成 | 第19-20页 |
2.2.2.3 4-叠氮基苯甲酸N-羟基琥珀酰亚胺活性酯(NABS)的合成 | 第20页 |
2.2.3 PET膜表面脲酶的光固定化 | 第20-21页 |
2.2.3.1 光活性脲酶的制备 | 第20页 |
2.2.3.2 PET膜片的清洗与制备 | 第20-21页 |
2.2.3.3 固定化脲酶的制备 | 第21页 |
2.2.4 测试与表征 | 第21-22页 |
2.2.4.1 脲酶活性检测方法 | 第21页 |
2.2.4.2 傅立叶变换红外光谱(FTIR) | 第21页 |
2.2.4.3 X射线光电子能谱(XPS) | 第21页 |
2.2.4.4 重量法测固定化脲酶的接枝密度 | 第21-22页 |
2.3 结果和讨论 | 第22-30页 |
2.3.1 脲酶固定化过程的结构表征 | 第22-26页 |
2.3.1.1 有机中间体的红外光谱 | 第22-24页 |
2.3.1.2 与活性酯反应前后脲酶的红外光谱比较 | 第24-25页 |
2.3.1.3 PET膜光固定脲酶的XPS分析 | 第25-26页 |
2.3.2 影响PET膜表面光固定脲酶的因素 | 第26-30页 |
2.3.2.1 脲酶与活性酯反应前后的活性比较 | 第26页 |
2.3.2.2 光固定脲酶的表面接枝密度 | 第26-27页 |
2.3.2.3 紫外光辐照时间对固定化脲酶活性的影响 | 第27页 |
2.3.2.4 温度对脲酶活性的影响 | 第27-28页 |
2.3.2.5 pH值对脲酶活性的影响 | 第28-29页 |
2.3.2.6 光活性脲酶液浓度对固定化脲酶活性的影响 | 第29页 |
2.3.2.7 固定化脲酶的重复使用稳定性 | 第29-30页 |
2.4 小结 | 第30-31页 |
第三章 脲酶在聚醚砜膜表面的光固定 | 第31-37页 |
3.1 前言 | 第31页 |
3.2 材料和方法 | 第31-32页 |
3.2.1 材料 | 第31页 |
3.2.2 实验方法 | 第31-32页 |
3.2.2.1 聚醚砜膜片的制备 | 第31页 |
3.2.2.2 光活性脲酶溶液的制备 | 第31-32页 |
3.2.2.3 光固定脲酶的制备 | 第32页 |
3.3 结果和讨论 | 第32-36页 |
3.3.1 光固定脲酶的表面接枝密度 | 第32-33页 |
3.3.2 紫外光辐照时间对固定化脲酶活性的影响 | 第33页 |
3.3.3 光活性脲酶液浓度对固定化脲酶活性的影响 | 第33-34页 |
3.3.4 温度对脲酶活性的影响 | 第34页 |
3.3.5 pH值对脲酶活性的影响 | 第34-35页 |
3.3.6 固定化脲酶的重复使用稳定性 | 第35页 |
3.3.7 固定化脲酶的储存稳定性 | 第35-36页 |
3.4 小结 | 第36-37页 |
第四章 牛血清白蛋白在聚氨酯膜表面的光固定 | 第37-46页 |
4.1 前言 | 第37页 |
4.2 实验部分 | 第37-38页 |
4.2.1 试剂和仪器 | 第37页 |
4.2.2 活性酯对牛血清白蛋白的修饰 | 第37-38页 |
4.2.3 修饰率的测定方法 | 第38页 |
4.2.4 紫外光谱与荧光光谱分析 | 第38页 |
4.3 结果与讨论 | 第38-45页 |
4.3.1 BSA修饰前后的红外光谱 | 第38-39页 |
4.3.2 BSA修饰前后的紫外光谱 | 第39-40页 |
4.3.3 BSA的修饰率 | 第40-41页 |
4.3.4 Forster偶级-偶级无辐射能量转移确定活性酯在牛血清白蛋白中的结合位置或区域 | 第41-43页 |
4.3.5 BSA构象的变化 | 第43-44页 |
4.3.6 光固定牛血清白蛋白聚氨酯膜的表面形貌 | 第44-45页 |
4.4 小结 | 第45-46页 |
第五章 肝素在聚氨酯膜表面的光固定 | 第46-53页 |
5.1 前言 | 第46页 |
5.2 材料和方法 | 第46-48页 |
5.2.1 材料 | 第46-47页 |
5.2.2 方法 | 第47-48页 |
5.2.2.1 聚氨酯膜片的制备 | 第47页 |
5.2.2.2 对叠氮基苯甲酸和二胺类的反应 | 第47页 |
5.2.2.3 光活性肝素溶液的制备 | 第47页 |
5.2.2.4 肝素的光固定 | 第47页 |
5.2.2.5 肝素溶液标准曲线的绘制 | 第47-48页 |
5.2.2.6 固定化肝素浓度的测定 | 第48页 |
5.2.2.7 血小板黏附实验 | 第48页 |
5.3 结果和讨论 | 第48-52页 |
5.3.1 对叠氮基苯甲酸和二胺类的反应 | 第48-49页 |
5.3.2 肝素标准曲线的绘制 | 第49-51页 |
5.3.3 肝素化聚氨酯表面的血小板黏附 | 第51-52页 |
5.4 小结 | 第52-53页 |
第六章 本文结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60页 |