| 中文摘要 | 第1页 |
| 英文摘要 | 第4-16页 |
| 缩略词表 | 第16-17页 |
| 绪言 | 第17-22页 |
| 参考文献 | 第19-22页 |
| 第一部分 MAPCs的分离、培养和鉴定 | 第22-35页 |
| 一、前言 | 第22-23页 |
| 二、材料与方法 | 第23-29页 |
| (一) 试剂和设备 | 第23-24页 |
| (二) MAPCs的纯化、扩增、鉴定 | 第24-29页 |
| (三) 统计学分析 | 第29页 |
| 三、结果 | 第29-32页 |
| (一) MAPCs细胞形态 | 第29页 |
| (二) MAPCs的生长曲线 | 第29-30页 |
| (三) 流式细胞技术检测SSEA-1 | 第30页 |
| (四) 细胞表面标志的免疫荧光检测 | 第30-31页 |
| (五) MAPCs中Oct-4蛋白的表达 | 第31-32页 |
| 四、讨论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-35页 |
| 第二部分 条件培养基对MAPCs的诱导分化 | 第35-52页 |
| 一、前言 | 第35-36页 |
| 二、材料和方法 | 第36-42页 |
| (一) 试剂和设备 | 第36-37页 |
| (二) 细胞培养与鉴定 | 第37-38页 |
| (三) MAPCs向起搏细胞的诱导培养 | 第38-39页 |
| (四) 诱导分化后MAPCs细胞的检测 | 第39-42页 |
| (五) 统计学分析 | 第42页 |
| 三、结果 | 第42-48页 |
| (一) 窦房结细胞的培养和鉴定 | 第42-43页 |
| (二) 5-氮杂胞苷与ET-1联合对MAPCs诱导分化后细胞检测 | 第43-46页 |
| (三) 窦房结细胞培养液诱导MAPCs后的检测 | 第46-48页 |
| 四、讨论 | 第48-49页 |
| (一) 5-氮杂胞苷与ET-1联合对MAPCs的诱导分化 | 第48-49页 |
| (二) 窦房结细胞培养液对MAPCs的诱导分化 | 第49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 第三部分 窦房结细胞共培养对MAPCs的诱导分化 | 第52-65页 |
| 一、前言 | 第52页 |
| 二、材料和方法 | 第52-57页 |
| (一) 试剂和设备 | 第52-54页 |
| (二) 细胞培养 | 第54页 |
| (三) MAPCs与新生大鼠窦房结细胞共培养 | 第54页 |
| (四) 诱导分化后MAPCs的检测 | 第54-57页 |
| (五) 统计学分析 | 第57页 |
| 三.结果 | 第57-59页 |
| (一) 形态学观测 | 第57-58页 |
| (二) 起搏相关标志物的表达 | 第58-59页 |
| (三) 起搏基因的real-time PCR检测 | 第59页 |
| 四、讨论 | 第59-63页 |
| (一) MAPCs与新生大鼠窦房结细胞共培养模型的建立 | 第59-60页 |
| (二) 与新生大鼠窦房结细胞共培养诱导后MAPCs起搏相关离子通道的检测 | 第60-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 第四部分 起搏样细胞起搏功能的体外检测 | 第65-70页 |
| 一、前言 | 第65页 |
| 二、材料和方法 | 第65-67页 |
| (一) 试剂和设备 | 第65-66页 |
| (二) 细胞培养 | 第66页 |
| (三) 起搏样细胞对静息新生大鼠心室肌单层的作用 | 第66-67页 |
| (四) 统计学分析 | 第67页 |
| 三、结果 | 第67-68页 |
| (一) 起搏样细胞对静息心肌单层的起搏作用 | 第67-68页 |
| (二) 异丙肾上腺素对搏动频率的影响 | 第68页 |
| (三) 混合细胞Connexin免疫荧光染色 | 第68页 |
| 四、讨论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-70页 |
| 全文小结 | 第70-71页 |
| 本课题的创新性 | 第71页 |
| 本课题进一步研究工作计划 | 第71-72页 |
| 文献综述 | 第72-84页 |
| 在读期间发表论文 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
