| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 引言 | 第9-25页 |
| 1.1 间充质干细胞简介 | 第9-11页 |
| 1.1.1 间充质干细胞的发现 | 第9页 |
| 1.1.2 间充质干细胞的生物学特性 | 第9-10页 |
| 1.1.3 间充质干细胞的医学应用研究 | 第10-11页 |
| 1.2 组织工程 | 第11-17页 |
| 1.2.1 MSCs组织工程应用的研究 | 第12-13页 |
| 1.2.2 间充质干细胞与骨损伤修复 | 第13-15页 |
| 1.2.3 三维支架与组织工程 | 第15-16页 |
| 1.2.4 胶原支架 | 第16-17页 |
| 1.3 干细胞示踪分子影像技术 | 第17-22页 |
| 1.3.1 核磁共振成像技术 | 第18-19页 |
| 1.3.2 核医学成像技术 | 第19-20页 |
| 1.3.3 光学成像技术 | 第20-22页 |
| 1.4 本课题主要研究内容及创新之处 | 第22-25页 |
| 1.4.1 本课题的立题依据及意义 | 第22-23页 |
| 1.4.2 本课题主要研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 三标记成像系统的建立 | 第25-45页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第25-27页 |
| 2.1.1 质粒与细胞 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-37页 |
| 2.2.1 重组慢病毒载体pLVX-RfLuc-Gluc的构建 | 第27-33页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第33-34页 |
| 2.2.3 重组慢病毒的制备 | 第34-36页 |
| 2.2.4 Ag_2S和荧光素酶联合标记系统的构建 | 第36-37页 |
| 2.2.5 联合标记效果分析 | 第37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 2.3.1 重组慢病毒载体的构建及验证 | 第37-40页 |
| 2.3.2 感染293T/17细胞、获得慢病毒 | 第40-41页 |
| 2.3.3 慢病毒滴度测定与转染hMSCs | 第41页 |
| 2.3.4 转染hMSCs | 第41-42页 |
| 2.3.5 联合标记方法的构建 | 第42-43页 |
| 2.3.6 三标记hMSCs的Ag2S QDs荧光 | 第43-44页 |
| 2.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 三标记系统的体外评估 | 第45-55页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.1 细胞及动物 | 第45页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第45-46页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.2.1 三标记hMSCs的安全性评估 | 第46-47页 |
| 3.2.2 三标记信号的体外评估 | 第47-49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-53页 |
| 3.3.1 三标记hMSCs的安全性评估 | 第49-51页 |
| 3.3.2 三标记信号的体外评估 | 第51-53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 骨损伤修复的活体示踪研究 | 第55-66页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第55-56页 |
| 4.1.1 动物 | 第55页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.2.1 颅骨损伤模型的建立与hMSCs移植治疗 | 第56-57页 |
| 4.2.2 hMSCs移植治疗示踪研究 | 第57-58页 |
| 4.2.3 颅骨损伤疗效分析 | 第58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-64页 |
| 4.3.1 颅骨损伤模型的建立 | 第59页 |
| 4.3.2 三标记示踪干细胞移植治疗颅骨损伤的成像 | 第59-62页 |
| 4.3.3 颅骨损伤疗效分析 | 第62-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-66页 |
| 结论与展望 | 第66-68页 |
| 结论 | 第66页 |
| 展望 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 附录 | 第76-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
