| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 1 文献综述 | 第16-34页 |
| ·等离子体技术 | 第16-20页 |
| ·等离子体的概念 | 第16页 |
| ·等离子体的分类 | 第16-17页 |
| ·低温等离子体技术与应用现状 | 第17-20页 |
| ·低温等离子体的灭菌研究进展 | 第20-24页 |
| ·等离子体灭菌研究 | 第20-21页 |
| ·等离子体灭菌模型研究 | 第21页 |
| ·等离子体灭菌的生物学效应 | 第21-22页 |
| ·低温等离子体的灭菌机理 | 第22-24页 |
| ·微生物诱变育种方法 | 第24-27页 |
| ·常用诱变方法 | 第24-27页 |
| ·等离子体诱变法 | 第27页 |
| ·微生物发酵生产乙醇进展 | 第27-33页 |
| ·微生物发酵生产乙醇现状 | 第27-30页 |
| ·木质纤维素生产乙醇介绍 | 第30-33页 |
| ·本课题研究目的和内容 | 第33-34页 |
| 2 DBD等离子体对酿酒酵母细胞的生物学效应研究 | 第34-50页 |
| ·前言 | 第34页 |
| ·实验仪器与材料 | 第34-37页 |
| ·DBD等离子体装置 | 第34-36页 |
| ·实验菌株及培养条件 | 第36-37页 |
| ·实验仪器 | 第37页 |
| ·实验药品 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-41页 |
| ·DBD等离子体对S.cerevisiae生长的影响 | 第37-38页 |
| ·细胞染色观察 | 第38页 |
| ·胞外蛋白含量的测定 | 第38-39页 |
| ·胞外核酸含量的测定 | 第39页 |
| ·细胞生长状态观察 | 第39页 |
| ·荧光染色观察细胞核的变化 | 第39-40页 |
| ·细胞周期的测定 | 第40-41页 |
| ·数据统计方法 | 第41页 |
| ·实验结果和讨论 | 第41-48页 |
| ·等离子体处理对酵母存活率的影响 | 第41-43页 |
| ·等离子体对细胞着色的影响 | 第43-44页 |
| ·等离子体对S.cerevisiae胞内蛋白和核酸的影响 | 第44-45页 |
| ·等离子体对酵母细胞生长的影响 | 第45-46页 |
| ·等离子体对细胞核的影响 | 第46页 |
| ·等离子体对细胞周期的影响 | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-48页 |
| ·小结 | 第48-50页 |
| 3 介质阻挡放电等离子体对酿酒酵母氧化损伤的研究 | 第50-66页 |
| ·前言 | 第50-51页 |
| ·实验仪器和材料 | 第51-52页 |
| ·实验仪器 | 第51页 |
| ·实验菌株及培养条件 | 第51页 |
| ·等离子体处理方式 | 第51-52页 |
| ·实验试剂 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-56页 |
| ·等离子体处理后水中活性氧化物含量测定 | 第52页 |
| ·S.cerevisiae胞内活性氧含量测定 | 第52-53页 |
| ·等离子体处理后胞内抗氧化物质的测定 | 第53-54页 |
| ·等离子体处理再培养3h后胞内抗氧化酶活力测定 | 第54-55页 |
| ·丹酚酸B抗氧化研究 | 第55页 |
| ·数据统计方法 | 第55-56页 |
| ·实验结果和讨论 | 第56-65页 |
| ·等离子体处理水中活性氧化物含量的变化 | 第56页 |
| ·等离子体处理S.cerevisiae胞内ROS含量的变化 | 第56-59页 |
| ·等离子体处理后胞内抗氧化物含量的变化 | 第59-62页 |
| ·等离子体处理再培养3h后胞内SOD和CAT活力的变化 | 第62-63页 |
| ·丹酚酸B对酵母胞内ROS含量的影响 | 第63-64页 |
| ·讨论 | 第64-65页 |
| ·小结 | 第65-66页 |
| 4 介质阻挡放电等离子体诱变选育酿酒酵母的研究 | 第66-78页 |
| ·前言 | 第66页 |
| ·实验仪器和材料 | 第66-67页 |
| ·实验仪器和药品 | 第66-67页 |
| ·实验菌株与培养条件 | 第67页 |
| ·实验方法 | 第67-70页 |
| ·S.cerevisiae菌株的驯化及等离子体处理方法 | 第67页 |
| ·筛选方法的选择 | 第67-68页 |
| ·高产乙醇菌株的筛选 | 第68页 |
| ·耐高温和高浓度底物的正效应菌株的筛选 | 第68页 |
| ·分析方法 | 第68-70页 |
| ·实验结果 | 第70-76页 |
| ·醇梯度培养驯化S.cerevisiae | 第70页 |
| ·筛选方法的选择 | 第70-72页 |
| ·耐高温和高浓度底物的高产乙醇菌株筛选 | 第72-76页 |
| ·讨论 | 第76-77页 |
| ·小结 | 第77-78页 |
| 5 介质阻挡放电等离子体诱变选育休哈塔假丝酵母的研究 | 第78-97页 |
| ·前言 | 第78页 |
| ·实验仪器和材料 | 第78-80页 |
| ·等离子体装置 | 第78-80页 |
| ·实验菌株与培养条件 | 第80页 |
| ·实验仪器和药品 | 第80页 |
| ·实验方法 | 第80-84页 |
| ·等离子体对C.shehatae接种体的作用 | 第80-81页 |
| ·等离子体诱变、筛选C.shehatae突变株 | 第81页 |
| ·突变株的筛选及其木糖乙醇发酵能力的测定 | 第81-82页 |
| ·突变株的葡萄糖乙醇发酵能力的测定 | 第82页 |
| ·突变株的木糖-葡萄糖混合乙醇发酵能力的测定 | 第82-83页 |
| ·分析方法 | 第83-84页 |
| ·实验结果和讨论 | 第84-96页 |
| ·等离子体对C.shehatae接种体的激活作用 | 第84-86页 |
| ·等离子体诱变条件的确定 | 第86-87页 |
| ·摇瓶发酵验证TTC筛选方法的有效性 | 第87-88页 |
| ·突变株的筛选及其木糖乙醇发酵 | 第88-93页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株的葡萄糖乙醇发酵 | 第93页 |
| ·突变株C81015与野生型菌株的木糖-葡萄糖混合乙醇发酵 | 第93-94页 |
| ·讨论 | 第94-96页 |
| ·小结 | 第96-97页 |
| 6 休哈塔假丝酵母突变株关键酶基因XYL1和XYL2的分析 | 第97-111页 |
| ·前言 | 第97页 |
| ·实验仪器和材料 | 第97-98页 |
| ·实验仪器 | 第97页 |
| ·菌株和试剂 | 第97-98页 |
| ·引物合成 | 第98页 |
| ·实验方法 | 第98-100页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株基因组DNA的提取与检测 | 第98页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株26S rDNA基因的克隆和测序 | 第98-99页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株木糖还原酶基因XYL1的克隆和测序 | 第99页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株木糖醇脱氢酶基因XYL2的克隆和测序 | 第99-100页 |
| ·实验结果和讨论 | 第100-109页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株基因组DNA的提取 | 第100-101页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株26S rDNA基因的克隆和纯化 | 第101-102页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株XR基因XYL1的克隆和纯化 | 第102页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株XDH基因XYL2的克隆和纯化 | 第102-103页 |
| ·突变株C81015和野生型菌株XYL1和XYL2基因序列比对 | 第103-109页 |
| ·讨论 | 第109-110页 |
| ·小结 | 第110-111页 |
| 结论 | 第111-113页 |
| 展望 | 第113-114页 |
| 创新点摘要 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-125页 |
| 附录A 英汉对照 | 第125-126页 |
| 附录B DNA测序图谱 | 第126-136页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第136-137页 |
| 致谢 | 第137-138页 |
| 作者简介 | 第138-140页 |
