| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 1 绪论 | 第16-18页 |
| 2 仪器与试剂 | 第18-22页 |
| 2.1 细胞株与病人原代样本 | 第18页 |
| 2.2 药物与主要试剂 | 第18-20页 |
| 2.3 仪器 | 第20-22页 |
| 3 实验方法 | 第22-29页 |
| 3.1 细胞培养 | 第22页 |
| 3.2 SRB法检测细胞存活率 | 第22页 |
| 3.3 流式细胞术检测细胞周期分布 | 第22-23页 |
| 3.4 流式细胞术检测细胞凋亡情况 | 第23页 |
| 3.5 DAPI染色观察细胞核形态变化 | 第23页 |
| 3.6 Western blot检测相关蛋白表达水平 | 第23-25页 |
| 3.7 流式细胞术检测活性氧生成 | 第25页 |
| 3.8 Real-time PCR测定相关基因表达水平 | 第25-26页 |
| 3.9 SiRNA技术沉默骨肉瘤U20S细胞的CHOP | 第26-27页 |
| 3.10 半定量PCR测定相关基因表达水平 | 第27-28页 |
| 3.11 数据分析 | 第28-29页 |
| 4 实验结果 | 第29-56页 |
| 4.1 2-BP可以增强阿霉素对骨肉瘤细胞株的增殖抑制作用 | 第29-31页 |
| 4.2 2-BP可以增强阿霉素对骨肉瘤病人原代细胞样本的增殖抑制作用 | 第31-34页 |
| 4.3 2-BP协同阿霉素诱导骨肉瘤细胞凋亡 | 第34-40页 |
| 4.4 2-BP协同阿霉素诱导的细胞凋亡与活性氧产生相关 | 第40-46页 |
| 4.5 2-BP协同阿霉素诱导未折叠蛋白反应 | 第46-48页 |
| 4.6 2-BP协同阿霉素激活CHOP信号 | 第48-51页 |
| 4.7 沉默CHOP蛋白表达能够逆转2-BP协同阿霉素诱导的细胞凋亡 | 第51-56页 |
| 5 讨论 | 第56-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 综述 骨肉瘤的治疗进展 | 第63-76页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 本研究作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第76页 |
