| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-18页 |
| 第二章 材料与方法 | 第18-34页 |
| 2.1 主要材料和试剂 | 第18-21页 |
| 2.1.1 实验细胞系 | 第18页 |
| 2.1.2 实验主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.4 实验试剂配制 | 第20-21页 |
| 2.2 水凝胶材料的制备及优化 | 第21-26页 |
| 2.2.1 海藻酸钠水凝胶的制备 | 第21-22页 |
| 2.2.2 海藻酸钠/明胶水凝胶的制备 | 第22页 |
| 2.2.3 海藻酸钠/聚丙烯酰胺水凝胶的制备 | 第22-23页 |
| 2.2.4 明胶/聚丙烯酰胺水凝胶的制备 | 第23-24页 |
| 2.2.5 明胶/海藻酸钠/聚丙烯酰胺水凝胶的制备 | 第24-26页 |
| 2.2.6 明胶/海藻酸钠/聚丙烯酰胺/氧化石墨烯水凝胶的制备（最终体系的确定） | 第26页 |
| 2.3 水凝胶表面多肽修饰 | 第26页 |
| 2.4 复合水凝胶的理化性能表征 | 第26-28页 |
| 2.4.1 形态学观察 | 第26-27页 |
| 2.4.2 孔隙率的测定 | 第27页 |
| 2.4.3 傅里叶变换红外光谱（FTIR） | 第27页 |
| 2.4.4 溶胀行为 | 第27页 |
| 2.4.5 体外降解行为 | 第27-28页 |
| 2.4.6 力学性能 | 第28页 |
| 2.5 复合水凝胶的生物学评价 | 第28-31页 |
| 2.5.1 细胞培养 | 第28页 |
| 2.5.2 细胞毒性测试 | 第28-29页 |
| 2.5.3 CCK-8 细胞毒性活性检测实验 | 第29页 |
| 2.5.4 免疫荧光染色 | 第29页 |
| 2.5.5 酶联免疫吸附试验（ELISA） | 第29-30页 |
| 2.5.6 基质蛋白吸附实验 | 第30页 |
| 2.5.7 实时定量聚合酶链式反应（QRT-PCR） | 第30-31页 |
| 2.5.8 流式细胞仪分析细胞周期 | 第31页 |
| 2.6 水凝胶导管的制备及其理化表征 | 第31-33页 |
| 2.6.1 水凝胶导管的制备 | 第31-32页 |
| 2.6.2 导管形态学观察 | 第32页 |
| 2.6.3 导管内外径分析 | 第32页 |
| 2.6.4 导管的溶胀性能 | 第32-33页 |
| 2.6.5 导管的力学性能 | 第33页 |
| 2.7 数据分析 | 第33-34页 |
| 第三章 结果 | 第34-53页 |
| 3.1 水凝胶体系的优化 | 第34-35页 |
| 3.2 形态学观察 | 第35-36页 |
| 3.3 孔径大小分析及孔隙率 | 第36-38页 |
| 3.4 傅里叶变换红外光谱分析 | 第38-39页 |
| 3.5 力学分析 | 第39-40页 |
| 3.6 溶胀率 | 第40-41页 |
| 3.7 水凝胶的稳定性 | 第41-42页 |
| 3.8 L929成纤维细胞在凝胶材料上的细胞毒性评价 | 第42-43页 |
| 3.9 多肽优化的CCK-8 测试 | 第43-44页 |
| 3.10 多肽优化的免疫荧光染色观察 | 第44-45页 |
| 3.11 免疫荧光染色观察 | 第45-47页 |
| 3.12 神经营养因子的分泌和基质蛋白的吸附 | 第47页 |
| 3.13 流式细胞仪检测细胞周期及QRT-PCR | 第47-49页 |
| 3.14 水凝胶导管的制备及形态学观察 | 第49页 |
| 3.15 扫描电子显微镜对导管横断面的观察 | 第49-50页 |
| 3.16 导管内外径分析 | 第50-51页 |
| 3.17 溶胀行为 | 第51页 |
| 3.18 力学分析 | 第51-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-57页 |
| 第五章 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 英文缩写词表 | 第67-68页 |
| 综述 | 第68-85页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 硕士期间所发表的论文 | 第85-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
