| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-12页 |
| 英文缩略词 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1 癫痫概述 | 第13-14页 |
| 1.2 癫痫的病因和发病机制 | 第14-18页 |
| 1.2.1 癫痫的病因 | 第14-15页 |
| 1.2.2 癫痫的发病机制 | 第15-18页 |
| 1.3 miRNA概述 | 第18-23页 |
| 1.3.1 miRNA的发现和命名 | 第18-19页 |
| 1.3.2 miRNA的合成与作用机制 | 第19-20页 |
| 1.3.3 miRNA的特点 | 第20-21页 |
| 1.3.4 miRNA与疾病 | 第21-23页 |
| 1.4 miRNA与癫痫 | 第23-28页 |
| 1.4.1 miRNAs与癫痫关系密切 | 第23-24页 |
| 1.4.2 miRNAs与炎症反应在癫痫发病机制中的研究 | 第24页 |
| 1.4.3 miRNAs与突触可塑性在癫痫发病机制中的研究 | 第24-25页 |
| 1.4.4 miRNAs与细胞凋亡在癫痫发病机制中的研究 | 第25-26页 |
| 1.4.5 miRNAs在癫痫诊断中的研究 | 第26-27页 |
| 1.4.6 miRNAs在癫痫治疗的研究 | 第27-28页 |
| 1.5 miR-338-3p概述 | 第28-29页 |
| 1.6 本论文的研究内容和研究意义 | 第29-31页 |
| 第二章 材料、方法及设计 | 第31-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第31-35页 |
| 2.1.1 实验动物与实验细胞 | 第31页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.3 实验试剂的配制 | 第32-34页 |
| 2.1.4 实验设备及仪器 | 第34-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-47页 |
| 2.2.1 实验设计与分组 | 第35-36页 |
| 2.2.2 建立海人酸诱导的癫痫动物模型 | 第36-37页 |
| 2.2.3 小鼠侧脑室立体定位注射 | 第37页 |
| 2.2.4 小鼠脑电图监测 | 第37页 |
| 2.2.5 动物心脏灌注与取脑 | 第37-38页 |
| 2.2.6 原代神经元的分离和培养 | 第38页 |
| 2.2.7 海人酸处理原代神经元 | 第38-39页 |
| 2.2.8 总RNA的提取 | 第39页 |
| 2.2.9 RNA的逆转录 | 第39-40页 |
| 2.2.10 实时荧光定量PCR | 第40-43页 |
| 2.2.11 蛋白质免疫印迹(Western blot实验) | 第43-46页 |
| 2.2.12 统计分析 | 第46页 |
| 2.2.13 运用TargetScan预测miR-338-3p的靶基因 | 第46页 |
| 2.2.14 miR-338-3p预测靶基因的G0分析 | 第46页 |
| 2.2.15 miR-338-3p预测靶基因的KEGG分析 | 第46-47页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第47-55页 |
| 3.1 miR-338-3p在KA诱导的动物模型和细胞模型中表达水平下降 | 第47-50页 |
| 3.1.1 KA诱导的癫痫模型 | 第47页 |
| 3.1.2 miR-338-3p在KA诱导的动物模型中表达水平下降 | 第47-49页 |
| 3.1.3 miR-338-3p在KA诱导的细胞模型中表达水平下降 | 第49-50页 |
| 3.2 miR-338-3p特异性激动剂可改善KA诱导的痫性发作 | 第50-51页 |
| 3.2.1 miR-338-3p agomir干预对小鼠海马miR-338-3p表达的影响 | 第50页 |
| 3.2.2 miR-338-3p agomir干预对小鼠痫性发作的影响 | 第50-51页 |
| 3.3 miR-338-3p在癫痫发病中可能靶基因的探索 | 第51-55页 |
| 3.3.1 miR-338-3p靶基因预测、G0分析及KEGG分析 | 第51-53页 |
| 3.3.2 miR-338-3p预测靶基因在癫痫动物模型中的实验性验证 | 第53-55页 |
| 第四章 讨论 | 第55-57页 |
| 第五章 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69页 |
