| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1.绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 含喹啉废水的来源以及危害 | 第9页 |
| 1.2 含喹啉废水的的处理方法 | 第9-13页 |
| 1.2.1 物理法和化学法 | 第10-11页 |
| 1.2.2 生物法 | 第11-13页 |
| 1.3 微生物固定化技术在处理废水处理中的应用 | 第13-16页 |
| 1.3.1 微生物固定化的方法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 固定化载体的选择 | 第15-16页 |
| 1.4 研究的内容及意义 | 第16-19页 |
| 1.4.1 研究的主要内容 | 第16-17页 |
| 1.4.2 研究的意义 | 第17-19页 |
| 2.材料和方法 | 第19-32页 |
| 2.1 菌种来源 | 第19页 |
| 2.2 实验仪器和试剂 | 第19-20页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第19页 |
| 2.2.2 培养基的配制 | 第19-20页 |
| 2.3 实验方案 | 第20-24页 |
| 2.3.1 固定化材料的制备 | 第20页 |
| 2.3.2 固定化方法 | 第20-22页 |
| 2.3.3 菌株对喹啉生物降解实验 | 第22页 |
| 2.3.4 响应曲面法确定最佳降解条件 | 第22-23页 |
| 2.3.5 固定化细胞和悬浮细胞对喹啉的生物降解 | 第23页 |
| 2.3.6 ZnONPs/PVA的强度和可重复使用性 | 第23-24页 |
| 2.4 实验分析检测方法 | 第24-32页 |
| 2.4.1 喹啉浓度测定 | 第24-25页 |
| 2.4.2 生物量测定 | 第25页 |
| 2.4.3 水质分析 | 第25-28页 |
| 2.4.4 脱氢酶活性 | 第28-30页 |
| 2.4.5 SDS测蛋白 | 第30-32页 |
| 3.结果与讨论 | 第32-60页 |
| 3.1 Ochrobactrumsp.LC-1降解喹啉的性能研究 | 第32-45页 |
| 3.1.1 菌种的来源和分析 | 第32-35页 |
| 3.1.2 Ochrobactrumsp.LC-1喹啉降解效果 | 第35-36页 |
| 3.1.3 Ochrobactrumsp.LC-1喹啉降解动力学 | 第36-38页 |
| 3.1.4 Ochrobactrumsp.LC-1喹啉降解过程中C、N的变化 | 第38-41页 |
| 3.1.5 响应曲面法确定喹啉降解最佳环境条件 | 第41-45页 |
| 3.2 固定化细胞的制备及其性能表征 | 第45-49页 |
| 3.2.1 ZnONPs/PVA功能化生物材料的结构表征 | 第45-47页 |
| 3.2.2 ZnONPs/PVA功能化生物材料的强度表征 | 第47-49页 |
| 3.3 ZnONPs/PVA固定化细胞(未驯化)对喹啉降解的特性研究 | 第49-55页 |
| 3.3.1 固定化细胞和游离细胞对喹啉降解效果的比较 | 第49-51页 |
| 3.3.2 固定化细胞降解喹啉的影响因素 | 第51-54页 |
| 3.3.3 固定化细胞的可重复利用效果 | 第54-55页 |
| 3.4 ZnONPs/PVA固定化细胞(驯化)对喹啉降解的特性研究 | 第55-60页 |
| 3.4.1 固定化方法中投加喹啉量的优化 | 第55-56页 |
| 3.4.2 固定化细胞与游离细胞的比较及喹啉耐受性研究 | 第56-58页 |
| 3.4.3 固定化细胞的可重复利用效果 | 第58-60页 |
| 4.结论和建议 | 第60-62页 |
| 4.1 结论 | 第60-61页 |
| 4.2 建议 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 附录硕士研究生学习阶段发表论文 | 第69页 |
