| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-29页 |
| 实验一 全蝎对荷瘤小鼠肝癌生长转移的影响 | 第29-42页 |
| 1 材料 | 第29-30页 |
| 1.1 实验动物及细胞 | 第29页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第29-30页 |
| 1.3 主要缓冲液 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-35页 |
| 2.1 全蝎含药血清的制备 | 第30-31页 |
| 2.2 全蝎水煎剂制备及用量 | 第31页 |
| 2.3 动物分组及造模 | 第31-32页 |
| 2.4 药物干预方式 | 第32页 |
| 2.5 观察一般情况 | 第32页 |
| 2.6 活体成像系统分析 | 第32页 |
| 2.7 苏木素伊红(H&E)染色 | 第32-33页 |
| 2.8 免疫组化染色 | 第33-34页 |
| 2.9 蛋白质印迹(Western Blot,WB) | 第34-35页 |
| 2.10 统计方法 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-39页 |
| 3.1 荷瘤小鼠一般情况 | 第35-36页 |
| 3.2 息风药全蝎抑制肝癌荷瘤小鼠肿瘤转移 | 第36-38页 |
| 3.3 息风药全蝎抑制肝癌EMT | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-42页 |
| 实验二 全蝎对肝癌细胞增殖、凋亡和迁移的影响 | 第42-51页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| 1.1 实验动物及细胞 | 第42页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第42-43页 |
| 2 方法 | 第43-46页 |
| 2.1 全蝎含药血清的制备 | 第43页 |
| 2.2 细胞复苏和培养 | 第43-44页 |
| 2.3 药物干预 | 第44页 |
| 2.4 EdU染色检测细胞增殖状态 | 第44页 |
| 2.5 TUNEL染色检测细胞凋亡情况 | 第44-45页 |
| 2.6 划痕实验检测肝癌细胞迁移能力 | 第45-46页 |
| 2.7 Transwell实验检测肝癌细胞侵袭能力 | 第46页 |
| 2.8 统计方法 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-49页 |
| 3.1 全蝎抑制肝癌细胞Hepa1-6增殖 | 第46-47页 |
| 3.2 全蝎促进肝癌细胞Hepa1-6凋亡 | 第47-48页 |
| 3.3 全蝎抑制肝癌细胞Hepa1-6迁移 | 第48页 |
| 3.4 全蝎抑制肝癌细胞Hepa1-6侵袭 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 实验三 全蝎对肝癌细胞EMT的影响 | 第51-60页 |
| 1 材料 | 第51-52页 |
| 1.1 实验动物及细胞 | 第51页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第51-52页 |
| 1.3 主要缓冲液 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-54页 |
| 2.1 全蝎含药血清的制备 | 第52页 |
| 2.2 实验分组 | 第52页 |
| 2.3 实时定量PCR | 第52-54页 |
| 2.4 WesternBlot | 第54页 |
| 2.5 免疫组化染色 | 第54页 |
| 2.6 统计学方法 | 第54页 |
| 3 结果 | 第54-57页 |
| 3.1 经TGF-β1诱导建立肝癌细胞EMT模型 | 第54-55页 |
| 3.2 全蝎对细胞EMT标志蛋白的影响 | 第55页 |
| 3.3 全蝎对细胞EMT相关的转录因子的影响 | 第55-56页 |
| 3.4 全蝎对组织EMT相关的转录因子的影响 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-60页 |
| 小结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-73页 |
| 个人简历和研究成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |