| 缩略表 | 第5-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1.1 桑枝研究现状 | 第15-18页 |
| 1.1.1 桑枝的简介 | 第15页 |
| 1.1.2 桑枝中的化学成分 | 第15-17页 |
| 1.1.2.1 黄酮类 | 第15-16页 |
| 1.1.2.2 生物碱类 | 第16页 |
| 1.1.2.3 茋类 | 第16页 |
| 1.1.2.4 香豆素类 | 第16页 |
| 1.1.2.5 多糖类及其他 | 第16-17页 |
| 1.1.3 桑枝的药理作用 | 第17-18页 |
| 1.1.3.1 降血糖活性 | 第17页 |
| 1.1.3.1 降血脂活性 | 第17页 |
| 1.1.3.3 抗氧化活性 | 第17页 |
| 1.1.3.4 抗菌消炎活性 | 第17-18页 |
| 1.1.3.5 增强免疫力的作用 | 第18页 |
| 1.2 植物诱导处理的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.1 物理诱导 | 第18页 |
| 1.2.2 化学诱导 | 第18-19页 |
| 1.2.3 生物诱导 | 第19页 |
| 1.3 植物诱导后的药理活性及化学成分变化 | 第19-20页 |
| 1.4 桑枝诱导的研究 | 第20页 |
| 1.5 抗菌作用的研究进展 | 第20-23页 |
| 1.5.1 抗菌活性 | 第20页 |
| 1.5.2 抗菌机制 | 第20-23页 |
| 1.5.2.1 对细胞壁完整性的影响 | 第21页 |
| 1.5.2.2 对细胞膜完整性的影响 | 第21页 |
| 1.5.2.3 对生物膜形成的影响 | 第21页 |
| 1.5.2.4 对菌体内相关酶活性的影响 | 第21-22页 |
| 1.5.2.5 对蛋白质及核酸合成的影响 | 第22-23页 |
| 第二章 引言 | 第23-27页 |
| 2.1 研究背景与意义 | 第23-24页 |
| 2.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 2.2.1 诱导桑枝提取物抑制T.rubrum的主要活性物质的分离鉴定 | 第24页 |
| 2.2.2 氧化白藜芦醇对3种条件致病菌的抑制活性 | 第24页 |
| 2.2.3 氧化白藜芦醇的抑菌机制研究 | 第24-25页 |
| 2.3 技术路线 | 第25-27页 |
| 第三章 桑枝提取物抑制红色毛癣菌主要活性物质的分离鉴定 | 第27-37页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第27页 |
| 3.2 仪器与设备 | 第27-28页 |
| 3.3 方法 | 第28-29页 |
| 3.3.1 桑枝活性物质的提取 | 第28页 |
| 3.3.2 提取物的萃取分段 | 第28页 |
| 3.3.3 菌悬液的制备 | 第28页 |
| 3.3.4 MIC的测定 | 第28-29页 |
| 3.3.5 活性物质的分离与鉴定 | 第29页 |
| 3.3.6 活性物质的贡献程度分析 | 第29页 |
| 3.3.7 协同抑菌试验 | 第29页 |
| 3.4 结果与分析 | 第29-36页 |
| 3.4.1 萃取物的抑菌活性 | 第29-31页 |
| 3.4.2 活性物质的分离鉴定 | 第31-33页 |
| 3.4.3 氧化白藜芦醇对T.rubrum的抑制活性 | 第33-34页 |
| 3.4.4 氧化白藜芦醇的贡献程度分析 | 第34-35页 |
| 3.4.5 抑菌协同效应 | 第35-36页 |
| 3.5 小结 | 第36-37页 |
| 第四章 氧化白藜芦醇对3种条件致病菌的抑制活性 | 第37-43页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第37页 |
| 4.2 仪器与设备 | 第37页 |
| 4.3 方法 | 第37-38页 |
| 4.3.1 氧化白藜芦醇的制备 | 第37页 |
| 4.3.2 菌悬液的制备 | 第37页 |
| 4.3.3 MIC的测定 | 第37-38页 |
| 4.3.4 MBC的测定 | 第38页 |
| 4.3.5 生长曲线的测定 | 第38页 |
| 4.3.6 时间—杀菌曲线的测定 | 第38页 |
| 4.3.7 协同抑菌试验 | 第38页 |
| 4.3.7.1 协同效应的MIC的测定 | 第38页 |
| 4.3.7.2 协同效应的MBC的测定 | 第38页 |
| 4.4 结果与分析 | 第38-42页 |
| 4.4.1 氧化白藜芦醇对3种条件致病菌的MIC值 | 第38-39页 |
| 4.4.2 氧化白藜芦醇对3种条件致病菌的MBC值 | 第39-40页 |
| 4.4.3 氧化白藜芦醇对菌株生长状态的影响 | 第40页 |
| 4.4.4 氧化白藜芦醇随时间与浓度的变化对菌株杀伤作用的影响 | 第40-41页 |
| 4.4.5 抑菌协同效应 | 第41-42页 |
| 4.5 小结 | 第42-43页 |
| 第五章 氧化白藜芦醇的抗菌机制研究 | 第43-61页 |
| 5.1 材料与试剂 | 第43页 |
| 5.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 5.3 方法 | 第43-46页 |
| 5.3.1 菌体细胞内氧化白藜芦醇的检测 | 第43页 |
| 5.3.2 菌体细胞形态的观察 | 第43-44页 |
| 5.3.3 菌株细胞壁完整性检测 | 第44页 |
| 5.3.3.1 碱性磷酸酶含量检测 | 第44页 |
| 5.3.3.2 抗粘附性检测 | 第44页 |
| 5.3.4 氧化白藜芦醇对菌株膜蛋白的影响 | 第44页 |
| 5.3.5 菌株细胞膜完整性检测 | 第44-45页 |
| 5.3.5.1 钾离子含量检测 | 第44-45页 |
| 5.3.5.2 核酸检测 | 第45页 |
| 5.3.6 菌株生物膜的形成检测 | 第45-46页 |
| 5.3.6.1 生物膜的形成和处理 | 第45页 |
| 5.3.6.2 结晶紫测定法 | 第45页 |
| 5.3.6.3 菌株表面疏水性的检测 | 第45-46页 |
| 5.4 结果与分析 | 第46-58页 |
| 5.4.1 菌体细胞内氧化白藜芦醇的含量 | 第46-47页 |
| 5.4.2 氧化白藜芦醇对菌株细胞形态的影响 | 第47-48页 |
| 5.4.3 氧化白藜芦醇对菌株细胞壁完整性的影响 | 第48-50页 |
| 5.4.3.1 碱性磷酸酶含量检测 | 第48-49页 |
| 5.4.3.2 粘附性的影响 | 第49-50页 |
| 5.4.4 氧化白藜芦醇对菌株膜蛋白的影响 | 第50-55页 |
| 5.4.5 氧化白藜芦醇对菌株细胞膜完整性的影响 | 第55-56页 |
| 5.4.5.1 钾离子含量检测 | 第55页 |
| 5.4.5.2 核酸泄露含量检测 | 第55-56页 |
| 5.4.6 氧化白藜芦醇对菌株生物膜形成的影响 | 第56-58页 |
| 5.4.6.1 抗生物膜的形成 | 第56-57页 |
| 5.4.6.2 疏水性的影响 | 第57-58页 |
| 5.5 小结 | 第58-61页 |
| 第六章 总结与讨论 | 第61-65页 |
| 6.1 氧化白藜芦醇在医学保健方面的应用潜力 | 第61页 |
| 6.2 氧化白藜芦醇的抗菌机制 | 第61-62页 |
| 6.3 桑枝提取物的开发与应用 | 第62页 |
| 6.4 方法与技术创新 | 第62-65页 |
| 参考文献 | 第65-81页 |
| 硕士期间成果 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
