中文摘要 | 第4-6页 |
英文摘要 | 第6-7页 |
引言 | 第11-14页 |
第一部分 小鼠放射性脑损伤模型建立及硫酸镁防治作用的研究 | 第14-23页 |
1.1 实验材料 | 第14-15页 |
1.1.1 实验动物 | 第14页 |
1.1.2 主要的试剂以及耗材 | 第14页 |
1.1.3 主要仪器 | 第14-15页 |
1.2 实验方法 | 第15-17页 |
1.2.1 动物的饲养与分组 | 第15页 |
1.2.2 小鼠放射性脑损伤模型的建立 | 第15页 |
1.2.3 硫酸镁应用浓度分组 | 第15页 |
1.2.4 小鼠临床征象观察 | 第15页 |
1.2.5 动物的处理以及取材方法 | 第15页 |
1.2.6 HE染色步骤 | 第15-16页 |
1.2.7 免疫组织化学染色步骤 | 第16-17页 |
1.3 实验结果 | 第17-20页 |
1.3.1 小鼠临床征象观察 | 第17页 |
1.3.2 小鼠脑组织病理形态的变化 | 第17-18页 |
1.3.3 不同浓度硫酸镁对照射后小鼠脑组织病理变化的影响 | 第18-20页 |
1.4 讨论 | 第20-23页 |
第二部分 硫酸镁对照射后野生型小鼠脑组织NF-κB/ICAM-1信号通路的调节 | 第23-43页 |
2.1 实验材料 | 第23-25页 |
2.1.1 实验动物 | 第23页 |
2.1.2 主要试剂与耗材 | 第23-24页 |
2.1.3 主要仪器及器材 | 第24页 |
2.1.4 主要溶液的配置 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-32页 |
2.2.1 动物的饲养、分组及观察时间点的确定 | 第25-26页 |
2.2.2 动物的处理以及取材方法 | 第26页 |
2.2.3 标本HE染色步骤 | 第26页 |
2.2.4 Western blot检测 | 第26-28页 |
2.2.5 实时荧光定量PCR(QRT-PCR) | 第28-30页 |
2.2.6 标本免疫组织化学染色步骤: | 第30-31页 |
2.2.7 酶联免疫吸附试验(ELISA)检测NF-κB和ICAM-1蛋白质的表达 | 第31-32页 |
2.2.8 数据统计分析 | 第32页 |
2.3 实验结果 | 第32-40页 |
2.3.1 硫酸镁对照射后不同时间小鼠脑组织病理改变的影响 | 第32-33页 |
2.3.2 硫酸镁对照射后小鼠脑组织中NF-κB、ICAM-1 mRNA表达变化的影响 | 第33-35页 |
2.3.3 硫酸镁对照射后小鼠脑组织中NF-κB、ICAM-1蛋白表达变化的影响 | 第35-39页 |
2.3.4 硫酸镁对照射后小鼠脑组织COX-2蛋白表达变化的影响 | 第39-40页 |
2.4 讨论 | 第40-43页 |
第三部分: 硫酸镁对P50基因敲除小鼠放射性脑损伤的保护作用研究 | 第43-52页 |
3.1 实验材料 | 第43-44页 |
3.1.1 实验动物 | 第43页 |
3.1.2 主要试剂与耗材 | 第43页 |
3.1.3 主要仪器 | 第43-44页 |
3.1.4 主要溶液配制 | 第44页 |
3.2 实验方法 | 第44-45页 |
3.2.1 P50小鼠敲除策略 | 第44-45页 |
3.2.2 P50~(-/-)小鼠放射性脑损伤模型的建立 | 第45页 |
3.2.3 动物的饲养分组以及观察时间点的确立 | 第45页 |
3.2.4 动物的处理以及取材方法 | 第45页 |
3.2.5 实时荧光定量PCR (QRT-PCR) | 第45页 |
3.2.6 标本免疫组织化学染色 | 第45页 |
3.2.7 ELISA检测NF-κB和ICAM-1蛋白表达的变化 | 第45页 |
3.2.8 标本HE染色 | 第45页 |
3.3 实验结果 | 第45-50页 |
3.3.1 小鼠放射性脑损伤模型的建立 | 第45-46页 |
3.3.2 硫酸镁干预后P50敲除小鼠与野生型小鼠ICAM-1 mRNA表达比较 | 第46-47页 |
3.3.3 ELISA检测ICAM-1蛋白表达变化 | 第47-49页 |
3.3.4 硫酸镁处理后野生型和P50~(-/-)小鼠脑组织病理改变 | 第49-50页 |
3.4 讨论 | 第50-52页 |
结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-59页 |
综述: NF-κB在肿瘤治疗中的作用 | 第59-66页 |
参考文献 | 第61-66页 |
中英文缩略词对照表 | 第66-67页 |
攻读硕士学位期间成果 | 第67-68页 |
致谢 | 第68页 |