摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
主要符号缩写表 | 第8-12页 |
1 绪论 | 第12-29页 |
1.1 β-淀粉样蛋白 | 第12-14页 |
1.1.1 阿尔茨海默病 | 第12页 |
1.1.2 Aβ | 第12-13页 |
1.1.3 AD的治疗方法 | 第13页 |
1.1.4 金属硫蛋白 | 第13-14页 |
1.2 研究方法 | 第14-21页 |
1.2.1 毛细管电泳 | 第14-15页 |
1.2.2 毛细管电泳的基本原理 | 第15-16页 |
1.2.3 毛细管电泳的分离模式 | 第16-17页 |
1.2.4 毛细管电泳的检测器 | 第17-19页 |
1.2.5 毛细管电泳研究生物分子相互作用的方法 | 第19-20页 |
1.2.6 毛细管电泳技术的应用 | 第20-21页 |
1.3 磁性纳米颗粒 | 第21-24页 |
1.3.1 磁性纳米颗粒的合成方法 | 第21-23页 |
1.3.2 表征技术 | 第23页 |
1.3.3 磁性纳米粒子的应用 | 第23-24页 |
1.4 天然产物活性成分提取方法 | 第24-25页 |
1.5 样品前处理技术 | 第25-28页 |
1.6 本论文研究的目的和内容 | 第28-29页 |
2 毛细管电泳研究金属硫蛋白与Aβ 的相互作用 | 第29-38页 |
2.1 前言 | 第29-30页 |
2.2 实验部分 | 第30-31页 |
2.2.1 仪器与试剂 | 第30页 |
2.2.2 溶液制备 | 第30-31页 |
2.2.3 毛细管电泳操作方法 | 第31页 |
2.3 结果与讨论 | 第31-37页 |
2.3.1 缓冲液种类、p H和浓度的选择 | 第31-32页 |
2.3.2 电压和进样时间的选择 | 第32-33页 |
2.3.3 培养时间的选择 | 第33-34页 |
2.3.4 MT与Aβ 结合参数的测定 | 第34-36页 |
2.3.5 圆二色谱图 | 第36页 |
2.3.6 质谱分析 | 第36-37页 |
2.4 小结 | 第37-38页 |
3 基于Dextran@Fe_3O_4提取紫薯活性成分的毛细管电泳分析 | 第38-48页 |
3.1 前言 | 第38-39页 |
3.2 实验部分 | 第39-41页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第39-40页 |
3.2.2 Dextran@Fe_3O_4的合成 | 第40页 |
3.2.3 Dextran@Fe_3O_4的表征 | 第40页 |
3.2.4 样品处理 | 第40页 |
3.2.5 毛细管电泳实验条件 | 第40-41页 |
3.3 结果与讨论 | 第41-47页 |
3.3.1 磁性复合纳米颗粒的表征 | 第41-42页 |
3.3.2 缓冲溶液种类及p H值的选择 | 第42-43页 |
3.3.3 缓冲溶液浓度的选择 | 第43-44页 |
3.3.4 添加剂及其浓度的选择 | 第44页 |
3.3.5 工作电压及进样时间 | 第44-45页 |
3.3.6 磁性纳米粒子与紫薯提取液的作用 | 第45-46页 |
3.3.7 紫外-可见、共振光散射光谱研究磁性纳米颗粒的吸附、解析 | 第46-47页 |
3.4 总结 | 第47-48页 |
4 QuEChERS-毛细管电泳法测定紫薯中的农药残留 | 第48-56页 |
4.1 前言 | 第48-49页 |
4.2 实验部分 | 第49-50页 |
4.2.1 仪器与试剂 | 第49页 |
4.2.2 标准溶液制备 | 第49页 |
4.2.3 毛细管的处理 | 第49-50页 |
4.2.4 QuEChERS处理实际样品的过程 | 第50页 |
4.2.5 毛细管电泳操作条件 | 第50页 |
4.3 结果与讨论 | 第50-55页 |
4.3.1 缓冲液p H的选择 | 第50-51页 |
4.3.2 缓冲液种类和浓度的选择 | 第51-52页 |
4.3.3 SDS浓度的选择 | 第52-53页 |
4.3.4 有机添加剂的影响 | 第53页 |
4.3.5 进样时间和电压的选择 | 第53-54页 |
4.3.6 方法性能分析 | 第54页 |
4.3.7 实际样品检测 | 第54-55页 |
4.4 小结 | 第55-56页 |
5 结论与展望 | 第56-57页 |
5.1 结论 | 第56页 |
5.2 展望 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文及研究成果 | 第66-67页 |
致谢 | 第67页 |