| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第1章 RHL抑制大鼠肝纤维化及LX2细胞增殖的研究 | 第14-42页 |
| 1.1 实验动物、试剂和仪器 | 第14-16页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.1.2 细胞株及培养条件 | 第14页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.1.4 主要试剂配制 | 第15页 |
| 1.1.5 实验仪器 | 第15-16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-24页 |
| 1.2.1 体内实验分组和建立大鼠胆汁淤积性肝纤维化模型 | 第16-17页 |
| 1.2.2 实验大鼠标本收集 | 第17页 |
| 1.2.3 大鼠血清生化指标检测 | 第17页 |
| 1.2.4 HE染色检测大鼠肝组织病理学改变 | 第17-18页 |
| 1.2.5 Masson三色染色检测大鼠肝组织纤维分布 | 第18页 |
| 1.2.6 大鼠肝组织中Hyp水平测定 | 第18-19页 |
| 1.2.7 免疫组织化学染色（immunohistochemical staining，IHC）检测大鼠肝组织中α-SMA分布 | 第19页 |
| 1.2.8 RT-PCR检测大鼠肝组织中的TGF-β1 和α-SMA mRNA含量 | 第19-21页 |
| 1.2.9 体外实验分组与处理 | 第21页 |
| 1.2.10 LX2细胞复苏、传代与冻存 | 第21页 |
| 1.2.11 CCK8法测RHL对LX-2 细胞增殖的影响 | 第21-22页 |
| 1.2.12 Western blotting测大鼠肝组织和LX2细胞中TGF-β1 和α-SMA蛋白量 | 第22-24页 |
| 1.2.13统计学分析 | 第24页 |
| 1.3 结果 | 第24-35页 |
| 1.3.1 实验大鼠的一般行为学表现和肝脏肉眼观察 | 第24-25页 |
| 1.3.2 各实验组大鼠生长率、肝脏质量与体质量比结果 | 第25-26页 |
| 1.3.3 各实验组大鼠血清生化检测结果 | 第26页 |
| 1.3.4 各实验组大鼠肝脏组织病理学改变 | 第26-27页 |
| 1.3.5 各实验组大鼠肝脏组织纤维成分分布情况 | 第27-28页 |
| 1.3.6 各实验组大鼠肝脏组织中Hyp含量 | 第28-29页 |
| 1.3.7 各组大鼠肝脏组织中α-SMA分布 | 第29-30页 |
| 1.3.8 各实验组大鼠肝组织中TGF-β1 和α-SMA m RNA的动态表达 | 第30-31页 |
| 1.3.9 各实验组大鼠肝组织中TGF-β1 和α-SMA蛋白的表达 | 第31-33页 |
| 1.3.10 RHL对LX-2 细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| 1.3.11不同浓度RHL处理 48h后LX-2 细胞TGF-β1 和α-SMA蛋白的表达 | 第34-35页 |
| 1.4 讨论 | 第35-38页 |
| 1.5 小结 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 第2章 综述 | 第42-53页 |
| 2.1 肝纤维化发病机制 | 第42-46页 |
| 2.1.1 肝纤维化与ECM | 第42-43页 |
| 2.1.2 肝纤维化与HSC细胞 | 第43-44页 |
| 2.1.3 肝纤维化与活化HSC的相关细胞因子及其信号转导途径 | 第44-46页 |
| 2.2 中医药在肝纤维化治疗中的应用 | 第46-48页 |
| 2.3 小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 导师简介 | 第55-56页 |
| 作者简介 | 第56-57页 |
| 学位论文数据集 | 第57页 |
