| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 纳米石墨烯材料在生物医疗领域的应用 | 第13-15页 |
| 1.1.1 石墨烯及其氧化物在生物成像方面的应用 | 第13-14页 |
| 1.1.2 石墨烯及其氧化物在生物载体方面的应用 | 第14页 |
| 1.1.3 石墨烯及其氧化物在肿瘤诊治领域的应用 | 第14-15页 |
| 1.2 石墨烯及其氧化物生物安全性研究进展 | 第15-18页 |
| 1.3 纳米氮化硼在生物医疗领域的应用 | 第18页 |
| 1.4 纳米氮化硼生物安全性研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 眼与眼毒理学研究进展 | 第19-23页 |
| 1.5.1 眼的主要结构和功能 | 第19-20页 |
| 1.5.2 外源化学物致眼损伤的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.5.3 纳米材料在眼科领域的应用 | 第22-23页 |
| 1.6 本研究的目的及意义 | 第23-24页 |
| 1.7 论文结构路线 | 第24-25页 |
| 第二章 材料制备及表征 | 第25-37页 |
| 2.1 前言 | 第25-26页 |
| 2.2 实验材料及方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 主要实验试剂及配方 | 第26页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.3 RGO、GO与PEG-BNs的制备 | 第27-28页 |
| 2.2.4 测试与表征 | 第28-29页 |
| 2.2.5 数据分析与图表绘制 | 第29页 |
| 2.3 实验结果 | 第29-35页 |
| 2.3.1 TEM分析结果 | 第29页 |
| 2.3.2 FTIR分析结果 | 第29-31页 |
| 2.3.3 拉曼光谱分析结果 | 第31页 |
| 2.3.4 XRD分析结果 | 第31-33页 |
| 2.3.5 TGA分析结果 | 第33-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-36页 |
| 2.5 结论 | 第36-37页 |
| 第三章 RGO、GO和PEG-BNs的眼表暴露毒性评估 | 第37-56页 |
| 3.1 前言 | 第37-38页 |
| 3.2 实验材料 | 第38-41页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第38页 |
| 3.2.2 主要实验试剂 | 第38-41页 |
| 3.2.3 主要实验仪器 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-45页 |
| 3.3.1 麻醉方法 | 第41页 |
| 3.3.2 实验模型 | 第41-42页 |
| 3.3.3 小鼠眼球的取材 | 第42页 |
| 3.3.4 小鼠眼球组织切片 | 第42-43页 |
| 3.3.5 免疫组化HE染色 | 第43页 |
| 3.3.6 TUNEL/Hoechst33258双染色 | 第43页 |
| 3.3.7 小鼠眼球总蛋白抽提 | 第43页 |
| 3.3.8 Westernblot | 第43-44页 |
| 3.3.9 虹膜血管荧光铸型 | 第44-45页 |
| 3.3.10 TNF-α含量测定 | 第45页 |
| 3.3.11 MDA含量测定 | 第45页 |
| 3.3.12 T-AOC含量测定 | 第45页 |
| 3.3.13 数据分析 | 第45页 |
| 3.4 实验结果 | 第45-54页 |
| 3.4.1 RGOGO和PEG-BNs眼表暴露对小鼠眼睛外观形态的影响 | 第45-47页 |
| 3.4.2 角膜及前房病理切片分析 | 第47-48页 |
| 3.4.3 角膜组织细胞凋亡分析 | 第48-49页 |
| 3.4.4 虹膜血管凝胶荧光造影 | 第49-51页 |
| 3.4.5 眼内炎症因子表达分析 | 第51-52页 |
| 3.4.6 氧化水平和总抗氧化能力分析 | 第52-53页 |
| 3.4.7 小鼠眼睛内容物中GO检测 | 第53-54页 |
| 3.5 讨论 | 第54-55页 |
| 3.6 结论 | 第55-56页 |
| 第四章 RGO、GO和PEG-BNs对小鼠的玻璃体腔暴露毒性研究 | 第56-65页 |
| 4.1 前言 | 第56-57页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第57页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第57页 |
| 4.2.2 主要实验试剂及配方 | 第57页 |
| 4.2.3 主要实验仪器 | 第57页 |
| 4.3 主要实验方法 | 第57-60页 |
| 4.3.0 实验模型 | 第57-58页 |
| 4.3.1 小鼠玻璃体腔注射 | 第58-59页 |
| 4.3.2 视网膜冰冻切片 | 第59页 |
| 4.3.3 视网膜冰冻切片HE染色 | 第59-60页 |
| 4.3.4 MDA含量与T-AOC含量的测定与分析 | 第60页 |
| 4.3.5 数据分析 | 第60页 |
| 4.4 实验结果 | 第60-63页 |
| 4.4.1 视网膜病理切片分析 | 第60页 |
| 4.4.2 氧化水平和抗氧化水平分析 | 第60-63页 |
| 4.5 讨论 | 第63-64页 |
| 4.6 结论 | 第64-65页 |
| 第五章 PEG-BNs体内急性毒性作用初探 | 第65-80页 |
| 5.1 前言 | 第65-66页 |
| 5.2 实验材料 | 第66-67页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第66页 |
| 5.2.2 主要实验试剂及配方 | 第66页 |
| 5.2.3 主要实验仪器 | 第66-67页 |
| 5.3 实验方法 | 第67-71页 |
| 5.3.1 实验模型 | 第67页 |
| 5.3.2 PEG-BNs的放射性同位素131I标记及标记率测定 | 第67-68页 |
| 5.3.3 PEG-BNs的生物代谢与分布 | 第68页 |
| 5.3.4 PEG-BNs的剂量毒性效应 | 第68页 |
| 5.3.5 辛伐他汀对PEG-BNs的毒性防治 | 第68-70页 |
| 5.3.6 数据分析 | 第70-71页 |
| 5.4 实验结果 | 第71-78页 |
| 5.4.1 131 I-PEG-BNs标记率测定 | 第71页 |
| 5.4.2 PEG-BNs的生物分布 | 第71页 |
| 5.4.3 PEG-BNs的剂量毒性效应 | 第71-73页 |
| 5.4.4 辛伐他汀对PEG-BNs的毒性防治效应 | 第73-75页 |
| 5.4.5 组织病理学检测 | 第75-78页 |
| 5.5 讨论 | 第78-79页 |
| 5.6 结论 | 第79-80页 |
| 第六章 总结与展望 | 第80-83页 |
| 6.1 全文总结 | 第80-81页 |
| 6.2 工作的创新点 | 第81页 |
| 6.3 工作展望 | 第81-83页 |
| 主要参考文献 | 第83-98页 |
| 附录 缩略词表 | 第98-100页 |
| 在学期间的研究成果 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
