| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 插图和附表清单 | 第15-19页 |
| 缩略语表 | 第19-21页 |
| 引言 | 第21-38页 |
| 1 沙葱的研究进展 | 第21-24页 |
| 1.1 沙葱的生物学特征 | 第21页 |
| 1.2 沙葱的营养成分 | 第21-22页 |
| 1.3 沙葱的生物学功效 | 第22-24页 |
| 1.3.1 沙葱对家畜生产性能以及畜产品品质的影响 | 第22页 |
| 1.3.2 沙葱对肉羊瘤胃内环境的影响 | 第22-23页 |
| 1.3.3 沙葱的抗菌、抗肿瘤活性 | 第23页 |
| 1.3.4 沙葱的抗氧化能力与调节机体免疫能力的研究 | 第23-24页 |
| 2 黄酮类化合物的研究概况 | 第24-36页 |
| 2.1 黄酮类化合物的结构与分类 | 第24-25页 |
| 2.2 黄酮类化合物的提取方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 水提法 | 第25页 |
| 2.2.2 有机溶剂提取法 | 第25-26页 |
| 2.2.3 超临界流体萃取法 | 第26页 |
| 2.2.4 酶法提取法 | 第26-27页 |
| 2.2.5 超声波辅助提取法 | 第27页 |
| 2.2.6 微波粉碎辅助提取 | 第27-28页 |
| 2.2.7 分子蒸馏技术 | 第28页 |
| 2.3 黄酮类化合物的测定方法 | 第28-30页 |
| 2.3.1 分光光度法 | 第28-29页 |
| 2.3.2 薄层扫描法 | 第29页 |
| 2.3.3 高效液相色谱法 | 第29页 |
| 2.3.4 荧光分析法 | 第29-30页 |
| 2.3.5 电化学分析法 | 第30页 |
| 2.4 黄酮类化合物的分离与纯化 | 第30-32页 |
| 2.4.1 柱层析法 | 第30-32页 |
| 2.4.1.1 聚酰胺柱层析 | 第30-31页 |
| 2.4.1.2 硅胶柱层析 | 第31页 |
| 2.4.1.3 氧化铝柱层析 | 第31-32页 |
| 2.4.2 有机溶剂萃取法 | 第32页 |
| 2.4.3 铅盐沉淀法 | 第32页 |
| 2.5 黄酮类化合物的结构鉴定 | 第32-33页 |
| 2.5.1 紫外光谱检测 | 第32页 |
| 2.5.2 红外光谱检测 | 第32-33页 |
| 2.5.3 液质联用检测 | 第33页 |
| 2.5.4 核磁共振图谱检测 | 第33页 |
| 2.5.5 其他 | 第33页 |
| 2.6 黄酮类化合物的生物学活性 | 第33-35页 |
| 2.6.1 抗氧化作用 | 第33-34页 |
| 2.6.2 抗肿瘤作用 | 第34页 |
| 2.6.3 抑菌作用 | 第34-35页 |
| 2.6.4 抗病毒作用 | 第35页 |
| 2.6.5 调节免疫作用 | 第35页 |
| 2.7 总结与展望 | 第35-36页 |
| 3 论文研究的总体思路 | 第36-38页 |
| 3.1 研究目的与意义 | 第36页 |
| 3.2 研究内容 | 第36-37页 |
| 3.3 技术路线 | 第37-38页 |
| 试验一 沙葱黄酮类化合物提取工艺的优化 | 第38-65页 |
| 1 黄酮类化合物测定方法的建立 | 第38-44页 |
| 1.1 材料与方法 | 第38-40页 |
| 1.1.1 材料 | 第38页 |
| 1.1.2 方法 | 第38-40页 |
| 1.2 结果与分析 | 第40-43页 |
| 1.2.1 沙葱乙醇提取物中黄酮类化合物的鉴定 | 第40-41页 |
| 1.2.2 测定波长的选择 | 第41-42页 |
| 1.2.3 标准曲线的绘制 | 第42页 |
| 1.2.4 试验方法评估结果 | 第42-43页 |
| 1.3 讨论 | 第43-44页 |
| 1.4 小结 | 第44页 |
| 2 超声波法提取沙葱总黄酮工艺优化 | 第44-55页 |
| 2.1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 2.1.1 材料 | 第44页 |
| 2.1.2 方法 | 第44-46页 |
| 2.2 结果与分析 | 第46-54页 |
| 2.2.1 提取功率对沙葱总黄酮得率的影响 | 第46-47页 |
| 2.2.2 料液比对沙葱总黄酮得率的影响 | 第47-48页 |
| 2.2.3 乙醇浓度对沙葱总黄酮得率的影响 | 第48页 |
| 2.2.4 提取时间对沙葱总黄酮得率的影响 | 第48-49页 |
| 2.2.5 提取温度对沙葱总黄酮得率的影响 | 第49-50页 |
| 2.2.6 响应面分析结果 | 第50-53页 |
| 2.2.7 最佳工艺验证 | 第53-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-55页 |
| 2.4 小结 | 第55页 |
| 3 纤维素酶解法提取沙葱总黄酮工艺优化 | 第55-65页 |
| 3.1 材料与方法 | 第55-57页 |
| 3.1.1 材料 | 第55-56页 |
| 3.1.2 方法 | 第56-57页 |
| 3.2 结果与分析 | 第57-63页 |
| 3.2.1 纤维素酶添加量对沙葱总黄酮得率的影响结果 | 第57-58页 |
| 3.2.2 体系PH值对沙葱总黄酮得率的影响结果 | 第58-59页 |
| 3.2.3 酶解温度对沙葱总黄酮得率的影响结果 | 第59页 |
| 3.2.4 酶解时间对沙葱总黄酮得率的影响结果 | 第59-60页 |
| 3.2.5 响应面分析结果 | 第60-63页 |
| 3.2.6 最佳工艺验证 | 第63页 |
| 3.3 讨论 | 第63-64页 |
| 3.4 小结 | 第64-65页 |
| 试验二 不同提取方法所得沙葱总黄酮对生物活性的影响 | 第65-87页 |
| 1 不同提取方法所得沙葱总黄酮体外抗氧化活性研究 | 第65-71页 |
| 1.1 材料与方法 | 第65-66页 |
| 1.1.1 材料 | 第65页 |
| 1.1.2 方法 | 第65-66页 |
| 1.2 结果与分析 | 第66-69页 |
| 1.2.1 不同提取方法所得沙葱总黄酮总还原能力的测定 | 第66-67页 |
| 1.2.2 不同提取方法所得沙葱总黄酮体外清除DPPH有机自由基能力的测定 | 第67-68页 |
| 1.2.3 不同提取方法所得沙葱总黄酮体外清除羟基自由基能力的测定 | 第68-69页 |
| 1.3 讨论 | 第69-70页 |
| 1.4 小结 | 第70-71页 |
| 2 不同提取方法所得沙葱总黄酮体外抗菌活性研究 | 第71-74页 |
| 2.1 材料与方法 | 第71-72页 |
| 2.1.1 材料 | 第71页 |
| 2.1.2 方法 | 第71-72页 |
| 2.2 结果与分析 | 第72-73页 |
| 2.2.1 不同提取方法所得沙葱总黄酮抑菌圈直径的测定结果 | 第72-73页 |
| 2.2.2 不同提取方法所得沙葱总黄酮最小抑菌浓度的测定 | 第73页 |
| 2.3 讨论 | 第73-74页 |
| 2.4 小结 | 第74页 |
| 3 不同提取方法所得沙葱总黄酮对绵羊外周血淋巴细胞增殖率以及免疫相关细胞因子IL-2、IL-4和IFN-Γ MRNA表达量的影响 | 第74-87页 |
| 3.1 材料与方法 | 第74-78页 |
| 3.1.1 材料 | 第74-75页 |
| 3.1.2 方法 | 第75-78页 |
| 3.2 结果与分析 | 第78-85页 |
| 3.2.1 不同提取方法所得沙葱总黄酮对绵羊外周血淋巴细胞增殖的影响 | 第78-80页 |
| 3.2.2 RNA纯度鉴定 | 第80页 |
| 3.2.3 绵羊外周血淋巴细胞IL-2、IL-4、IFN-r及β-ACTION基因荧光定量PCR扩增曲线和溶解曲线 | 第80-82页 |
| 3.2.4 不同提取方法所得沙葱总黄酮对绵羊外周血淋巴细胞IL-2基因MRNA相对表达量的影响 | 第82-83页 |
| 3.2.5 不同提取方法所得沙葱总黄酮对绵羊外周血淋巴细胞IL-4基因MRNA相对表达量的影响 | 第83-84页 |
| 3.2.6 不同提取方法所得沙葱总黄酮对绵羊外周血淋巴细胞IFN-Γ基因MRNA相对表达量的影响 | 第84-85页 |
| 3.3 讨论 | 第85-86页 |
| 3.4 小结 | 第86-87页 |
| 试验三 沙葱总黄酮的分离纯化及结构鉴定 | 第87-103页 |
| 1 材料与方法 | 第87-89页 |
| 1.1 材料 | 第87页 |
| 1.1.1 原料与试剂 | 第87页 |
| 1.1.2 仪器 | 第87页 |
| 1.2 方法 | 第87-89页 |
| 1.2.1 沙葱总黄酮的分离纯化 | 第87-88页 |
| 1.2.2 沙葱黄酮结构分析与检测 | 第88-89页 |
| 2 结果与分析 | 第89-101页 |
| 2.1 沙葱总黄酮的分离纯化结果 | 第89-90页 |
| 2.2 红外光谱检测结果 | 第90-91页 |
| 2.3 紫外光谱检测结果 | 第91-93页 |
| 2.4 液质联用检测结果 | 第93-101页 |
| 3 讨论 | 第101-102页 |
| 4 小结 | 第102-103页 |
| 试验四 沙葱总黄酮不同洗脱组分的生物活性研究 | 第103-121页 |
| 1 材料与方法 | 第103页 |
| 1.1 材料 | 第103页 |
| 1.1.1 原料与试剂 | 第103页 |
| 1.1.2 仪器 | 第103页 |
| 1.2 方法 | 第103页 |
| 1.2.1 沙葱总黄酮不同洗脱组分体外抗氧化活性研究 | 第103页 |
| 1.2.2 沙葱总黄酮不同洗脱组分体外抗菌活性研究 | 第103页 |
| 1.2.3 沙葱总黄酮不同洗脱组分对绵羊外周血淋巴细胞免疫调节作用研究 | 第103页 |
| 1.2.4 数据处理与统计学分析 | 第103页 |
| 2 结果与分析 | 第103-118页 |
| 2.1 沙葱总黄酮不同洗脱组分体外抗氧化活性研究 | 第103-107页 |
| 2.1.1 总还原能力的测定结果 | 第103-105页 |
| 2.1.2 清除DPPH有机自由基能力的测定结果 | 第105-106页 |
| 2.1.3 清除羟基自由基能力的测定结果 | 第106-107页 |
| 2.2 沙葱总黄酮不同洗脱组分体外抗菌活性研究 | 第107-118页 |
| 2.2.1 沙葱总黄酮不同洗脱组分抑菌圈的测定 | 第107-108页 |
| 2.2.2 沙葱总黄酮不同洗脱组分最小抑菌浓度的测定 | 第108页 |
| 2.2.3 沙葱总黄酮不同洗脱组分对绵羊外周血淋巴细胞增殖率以及免疫相关细胞因子IL-2、IL-4、IFN-Γ基因MRNA相对表达量的影响 | 第108-118页 |
| 3 讨论 | 第118-121页 |
| 3.1 沙葱黄酮抗氧化活性与其结构关系的分析 | 第118-119页 |
| 3.2 沙葱黄酮抗菌活性与其结构关系的分析 | 第119-120页 |
| 3.3 沙葱黄酮免疫调节活性与其结构关系的分析 | 第120-121页 |
| 4 小结 | 第121页 |
| 总结与展望 | 第121-123页 |
| 1 总体结论 | 第121-122页 |
| 2 主要创新点 | 第122页 |
| 3 建议 | 第122-123页 |
| 致谢 | 第123-124页 |
| 参考文献 | 第124-135页 |
| 作者简介 | 第135页 |
