| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第8-9页 |
| 目录 | 第9-14页 |
| 前言 | 第14-22页 |
| 1 miR-181 的生物学作用 | 第14-15页 |
| 2 miR-181 参与多种肿瘤疾病的发生和发展 | 第15-18页 |
| 2.1 miR-181 与神经胶质瘤 | 第15页 |
| 2.2 miR-181 与白血病 | 第15-16页 |
| 2.3 miR-181 与肺癌 | 第16页 |
| 2.4 miR-181 与胃癌 | 第16-17页 |
| 2.5 miR-181 与肝癌 | 第17页 |
| 2.6 miR-181 与其他疾病 | 第17-18页 |
| 3 金纳米分子的特性以及应用 | 第18-22页 |
| 3.1 纳米金自身具有好的生物活性 | 第18页 |
| 3.2 不同纳米金结构在肿瘤治疗和成像方面的应用 | 第18-20页 |
| 3.2.1 金纳米壳对肿瘤的治疗作用 | 第19页 |
| 3.2.2 金纳米棒对肿瘤的治疗作用 | 第19页 |
| 3.2.3 金纳米笼对肿瘤的治疗作用 | 第19-20页 |
| 3.3 纳米金作为药物载体的应用 | 第20-22页 |
| 第一部分 anti-miR-181 有效序列的筛选 | 第22-36页 |
| 1 材料与仪器 | 第22-25页 |
| 1.1 细胞系 | 第22页 |
| 1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 1.3 主要实验仪器设备 | 第23页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第23-24页 |
| 1.5 anti-miR-181s 的设计和合成 | 第24-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-29页 |
| 2.1 细胞培养 | 第25-26页 |
| 2.1.1 细胞冻存后的复苏 | 第25页 |
| 2.1.2 细胞的传代 | 第25页 |
| 2.1.3 细胞的冻存 | 第25-26页 |
| 2.1.4 细胞的培养 | 第26页 |
| 2.1.5 细胞的计数 | 第26页 |
| 2.2 细胞转染 | 第26-28页 |
| 2.3 转染条件优化 | 第28页 |
| 2.4 SRB 法检测 anti-miR-181s 对肝癌 SMMC-7721 细胞增殖的抑制作用 | 第28-29页 |
| 2.5 统计学分析 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-34页 |
| 3.1 转染条件优化 | 第29-31页 |
| 3.2 anti-miR-181s 对 SMMC-7721 细胞生长的抑制作用 | 第31-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 第二部分 anti-miR-181b 抑制 SMMC-7721 细胞生长作用的机制探究 | 第36-43页 |
| 1 材料与仪器 | 第36页 |
| 1.1 细胞株 | 第36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 2 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.1 细胞培养及转染 | 第36-37页 |
| 2.1.1 细胞培养 | 第36-37页 |
| 2.1.2 细胞转染 | 第37页 |
| 2.2 PI 单染检测 anti-miR-181b 转染后细胞周期相分布情况 | 第37-38页 |
| 2.3 Annexin V-FITC/PI 双染检测 anti-miR-181b 转染后的细胞凋亡情况 | 第38-39页 |
| 2.4 统计学分析 | 第39页 |
| 3 实验结果 | 第39-41页 |
| 3.1 流式细胞仪测定 anti-miR-181b 转染 48h 后对 SMMC-7721 细胞周期的影响 | 第39-41页 |
| 3.2 流式细胞仪测定 anti-miR-181b 转染 48h 后对 SMMC-7721 细胞凋亡的影响 | 第41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 第三部分 相变材料和 anti-miR-181b 混合物制备的初步研究 | 第43-52页 |
| 1 材料与仪器 | 第43-44页 |
| 1.1 细胞株 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43-44页 |
| 1.3 主要仪器 | 第44页 |
| 2 实验方法 | 第44-47页 |
| 2.1 相变材料 1-14 醇与 anti-miR-181b 混合物的制备 | 第44页 |
| 2.2 1-14 醇的 DSC 分析 | 第44-45页 |
| 2.3 相变材料 1-14 醇与 anti-miR-181b 混合物的稳定性研究 | 第45页 |
| 2.3.1 anti-miR-181b 的紫外吸收测定 | 第45页 |
| 2.3.2 anti-miR-181b 标准曲线的建立 | 第45页 |
| 2.4 SRB 法检测 1-14 醇与 anti-miR-181b 混合物对肝癌 SMMC-7721 细胞细胞增殖的抑制作用 | 第45-47页 |
| 2.4.1 细胞培养 | 第45-46页 |
| 2.4.2 加热后细胞形态的观察 | 第46页 |
| 2.4.3 加热后温度对 anti-miR-181b 活性的影响 | 第46页 |
| 2.4.4 细胞转染 | 第46-47页 |
| 3 实验结果 | 第47-50页 |
| 3.1 1-14 醇与 anti-miR-181b 的 DSC 图谱 | 第47页 |
| 3.2 1-14 醇与 anti-miR-181b 混合物的稳定性及标准曲线的建立 | 第47-49页 |
| 3.2.1 anti-miR-181b 最大紫外吸收波长的确定 | 第47-48页 |
| 3.2.2 anti-miR-181b 的标准曲线的建立 | 第48页 |
| 3.2.3 anti-miR-181b 与 1-14 醇的最佳比例 | 第48-49页 |
| 3.2.4 anti-miR-181b 与 1-14 醇混合物的稳定性 | 第49页 |
| 3.3 SRB 法检测 1-14 醇与 anti-miR-181b 混合物对肝癌 SMMC-7721 细胞细胞增殖的抑制作用 | 第49-50页 |
| 3.3.1 加热后细胞形态的观察 | 第49-50页 |
| 3.3.2 加热后温度对 anti-miR-181b 活性的影响 | 第50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| 第四部分 AuNCs-anti-miR-181b 的制备及体外初步研究 | 第52-65页 |
| 1 材料与仪器 | 第52-54页 |
| 1.1 细胞株 | 第52页 |
| 1.2 主要试剂 | 第52-53页 |
| 1.3 主要仪器 | 第53页 |
| 1.4 溶液配置 | 第53-54页 |
| 2 实验方法 | 第54-57页 |
| 2.1 金纳米笼(Au Nanocages)的制备 | 第54页 |
| 2.2 金纳米笼的载药和释放 | 第54-55页 |
| 2.2.1 金纳米笼中 1-14 醇的质量分数计算 | 第55页 |
| 2.2.2 金纳米笼中 anti-miR-181b 载药量的计算 | 第55页 |
| 2.2.3 anti-miR-181b 标准曲线的建立 | 第55页 |
| 2.3 SRB 法检测载药的金纳米笼对肝癌 SMMC-7721 细胞细胞增殖的抑制作用 | 第55-57页 |
| 2.3.1 细胞转染 | 第56-57页 |
| 2.3.2 载药 AuNcs 对 SMMC-7721 的影响 | 第57页 |
| 2.4 统计学分析 | 第57页 |
| 3 实验结果 | 第57-63页 |
| 3.1 金纳米笼形貌 | 第57-58页 |
| 3.2 金纳米笼载药量的计算以及释放 | 第58-60页 |
| 3.2.1 anti-miR-181b 标准曲线 | 第58-59页 |
| 3.2.2 金纳米笼中 1-14 醇的质量分数计算结果 | 第59页 |
| 3.2.3 anti-miR-181b 的载药量 | 第59页 |
| 3.2.4 anti-miR-181b 的释放曲线 | 第59-60页 |
| 3.3 SRB 法检测载药的金纳米笼对肝癌 SMMC-7721 细胞增殖的抑制作用.47 | 第60-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 全文总结 | 第65-67页 |
| 全文创新 | 第67-68页 |
| 全文不足 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 个人简历 | 第75页 |
