| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第12-18页 |
| 1.1 癫痫概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 癫痫的定义 | 第12页 |
| 1.1.2 癫痫的分类 | 第12页 |
| 1.1.3 癫痫的诊断 | 第12-13页 |
| 1.1.4 癫痫的治疗 | 第13页 |
| 1.2 癫痫的多药耐药 | 第13-16页 |
| 1.2.1 多药耐药蛋白（MDR） | 第14-15页 |
| 1.2.2 多药耐药相关蛋白 | 第15页 |
| 1.2.3 乳腺癌耐药蛋白（BCRP） | 第15-16页 |
| 1.3 卡马西平概述 | 第16页 |
| 1.4 固体脂质纳米大量研究 | 第16-18页 |
| 第二章 立题依据 | 第18-19页 |
| 第三章 卡马西平固体脂质纳米粒的制备及单次给药后药动学的考察 | 第19-29页 |
| 引言 | 第19页 |
| 第一节 卡马西平固体脂质纳米粒的制备 | 第19-23页 |
| 1 仪器与材料 | 第19-20页 |
| 1.1 仪器 | 第19页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第19-20页 |
| 2 处方优化 | 第20页 |
| 2.1 因素考察 | 第20页 |
| 2.2 验证试验 | 第20页 |
| 3 方法与结果 | 第20-23页 |
| 3.1 卡马西平固体脂质纳米粒的制备 | 第20-21页 |
| 3.2 粒径、Zeta电位和形态测量 | 第21页 |
| 3.3 卡马西平固体脂质纳米粒包封率的测量 | 第21-23页 |
| 3.3.1 色谱条件 | 第21-22页 |
| 3.3.2 标准曲线的绘制 | 第22页 |
| 3.3.3 精密度测量 | 第22页 |
| 3.3.4 回收率测量 | 第22页 |
| 3.3.5 包封率的测量 | 第22-23页 |
| 3.4 稳定性考察 | 第23页 |
| 4 讨论 | 第23页 |
| 第二节 单次给药后药动学的考察 | 第23-29页 |
| 1 仪器与材料 | 第23-24页 |
| 1.1 实验仪器 | 第23页 |
| 1.2 药品和试剂 | 第23-24页 |
| 1.3 实验动物 | 第24页 |
| 2 方法与结果 | 第24-27页 |
| 2.1 色谱条件 | 第24页 |
| 2.2 对照品溶液的制备 | 第24页 |
| 2.3 血浆与脑组织样品处理 | 第24页 |
| 2.4 标准曲线的制备 | 第24-25页 |
| 2.5 回收率和准确度实验 | 第25页 |
| 2.6 分散体系的配制 | 第25页 |
| 2.7 给药方法与血样采集 | 第25-26页 |
| 2.8 药动学影响 | 第26-27页 |
| 2.9 数据处理 | 第27页 |
| 3 讨论 | 第27-29页 |
| 第四章 连续多次给予卡马西平固体脂质纳米粒对脑药和血脑屏障P-糖蛋白表达的影响 | 第29-41页 |
| 引言 | 第29页 |
| 1 连续多次给予固体脂质纳米粒对脑药浓度的影响 | 第29-32页 |
| 1.1 仪器与材料 | 第29-30页 |
| 1.1.1 仪器器材 | 第29页 |
| 1.1.2 药品与试剂 | 第29-30页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第30页 |
| 1.2 方法与结果 | 第30-32页 |
| 1.2.1 色谱条件 | 第30页 |
| 1.2.2 对照品溶液的制备 | 第30页 |
| 1.2.3 血浆与脑组织样品处理 | 第30页 |
| 1.2.4 标准曲线的制备 | 第30页 |
| 1.2.5 回收率和准确度实验 | 第30-31页 |
| 1.2.6 给药方法与血样采集 | 第31页 |
| 1.2.7 脑药浓度 | 第31-32页 |
| 2 连续多次给予固体脂质纳米粒对血脑屏障上P-糖蛋白蛋白和mRNA表达的影响 | 第32-39页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第32-33页 |
| 2.1.1 仪器 | 第32页 |
| 2.1.2 试剂 | 第32页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第32-33页 |
| 2.2 Western Blot实验 | 第33-35页 |
| 2.2.1 蛋白提取 | 第33页 |
| 2.2.2 采用BCA法测量总蛋白浓度 | 第33页 |
| 2.2.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第33-34页 |
| 2.2.4 转膜 | 第34页 |
| 2.2.5 抗体与靶抗原的结合 | 第34-35页 |
| 2.2.6 曝光和显影 | 第35页 |
| 2.2.7 图像分析 | 第35页 |
| 2.2.8 统计学处理 | 第35页 |
| 2.3 RT-qPCR实验 | 第35-38页 |
| 2.3.1 动物给药及脑组织样品的取样 | 第35页 |
| 2.3.2 小鼠脑组织mRNA的提取 | 第35-36页 |
| 2.3.3 脑组织总mRNA的含量测定 | 第36页 |
| 2.3.4 RNA反转录为cDNA | 第36页 |
| 2.3.5 聚合酶链反应 | 第36-37页 |
| 2.3.6 数据处理 | 第37-38页 |
| 2.4 结果 | 第38-39页 |
| 2.4.1 给药不同时间点小鼠脑组织P-糖蛋白蛋白表达的变化 | 第38页 |
| 2.4.2 给药不同时间点小鼠脑组织P-糖蛋白的mRNA表达变化 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-41页 |
| 研究结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 在学期间的研究成果 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
