| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 1 前言 | 第10-13页 |
| 2 材料和方法 | 第13-22页 |
| 2.1 RGC-5的来源 | 第13页 |
| 2.2 实验试剂及耗材 | 第13-15页 |
| 2.2.1 主要仪器和软件 | 第13-14页 |
| 2.2.2 实验试剂及耗材 | 第14-15页 |
| 2.3. 实验方法 | 第15-22页 |
| 2.3.1 RGC-5复苏 | 第15-16页 |
| 2.3.2 RGC-5传代 | 第16页 |
| 2.3.3 RGC-5氧-糖剥夺模型的建立及细胞分组 | 第16-17页 |
| 2.3.4 荧光染色 | 第17页 |
| 2.3.5 Western blot检测 | 第17-19页 |
| 2.3.6 流式细胞仪检测 | 第19-20页 |
| 2.3.7 基因修饰的RGC-5的制备 | 第20页 |
| 2.3.8 RIP3i-RGC-5的荧光染色、Western blot检测和流式细胞仪检测方法同上 | 第20页 |
| 2.3.9 微量丙二醇(MDA)含量测定 | 第20-21页 |
| 2.3.10 数据收集和统计分析 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-29页 |
| 3.1 氧-糖剥夺8小时恢复至不同时间点后各组细胞的坏死情况 | 第22-23页 |
| 3.2 Nec-1预干预后,氧-糖剥夺8小时恢复至6小时的RGC-5程序性坏死的流式检测 | 第23-24页 |
| 3.3 氧-糖剥夺8小时恢复至不同时间点后RIP3蛋白的表达变化 | 第24-25页 |
| 3.4 通过加入吗啉寡核苷酸筛选出RIP3表达显著降低的RGC-5(RIP3i-RGC-5) | 第25-26页 |
| 3.5 氧-糖剥夺8小时恢复至6小时,RIP3i-RGC-5和RGC-5程序性坏死的流式检测 | 第26-27页 |
| 3.6 RIP3i-RGC-5氧-糖剥夺后MDA含量检测 | 第27-29页 |
| 4 讨论 | 第29-32页 |
| 5 结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-38页 |
| 综述 | 第38-48页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第49页 |
