| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 1. 实验材料 | 第14-17页 |
| 1.1 细胞系 | 第14页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 仪器及设备 | 第15-16页 |
| 1.4 试剂配制 | 第16-17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-24页 |
| 2.1 基因芯片技术检测蜂斗菜素作用后神经母细胞瘤细胞中基因的表达变化 | 第17-18页 |
| 2.1.1 细胞处理 | 第17页 |
| 2.1.2 细胞 RNA 的提取、纯化以及双链 DNA 的合成和纯化 | 第17页 |
| 2.1.3 生物素标记 cRNA 合成及纯化 | 第17-18页 |
| 2.1.4 芯片杂交 | 第18页 |
| 2.1.5 洗脱、染色、扫描芯片 | 第18页 |
| 2.2 RT-qPCR 验证基因芯片结果 | 第18-23页 |
| 2.2.1 细胞处理 | 第18页 |
| 2.2.2 引物的设计与合成 | 第18-19页 |
| 2.2.3 细胞总 RNA 的提取 | 第19-20页 |
| 2.2.4 RNA 质量的检测 | 第20-21页 |
| 2.2.5 cDNA 的合成 | 第21-22页 |
| 2.2.6 RT-qPCR 实验 | 第22-23页 |
| 2.3 RT-qPCR 检测蜂斗菜素对神经母细胞瘤细胞中 egr1、ctgf 及 gadd45a基因表达的影响 | 第23页 |
| 2.4 统计学分析 | 第23-24页 |
| 3. 实验结果 | 第24-40页 |
| 3.1 蜂斗菜素对神经母细胞瘤细胞基因表达的影响 | 第24-30页 |
| 3.2 基因芯片结果的验证 | 第30-35页 |
| 3.2.1 细胞总 RNA 的质量检测 | 第30页 |
| 3.2.2 引物特异性的检验 | 第30-32页 |
| 3.2.3 RT-qPCR 验证结果 | 第32-35页 |
| 3.3 蜂斗菜素对神经母细胞瘤细胞中egr1、ctgf及gadd45a基因表达的影响 | 第35-40页 |
| 3.3.1 蜂斗菜素对 SK-N-SH 细胞中 egr1、ctgf 及 gadd45a 基因表达的影响 | 第35-37页 |
| 3.3.2 蜂斗菜素对 SH-SY5Y 细胞中 egr1、ctgf 及 gadd45a 基因表达的影响 | 第37-40页 |
| 4. 讨论 | 第40-43页 |
| 全文结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 综述 | 第47-59页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 个人简历 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
