摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩写索引 | 第10-11页 |
1 绪论 | 第11-25页 |
1.1 研究背景 | 第11-25页 |
1.1.1 非小细胞肺癌的研究现状 | 第11-12页 |
1.1.2 趋化因子CCL5的研究现状 | 第12页 |
1.1.3 肿瘤细胞的凋亡 | 第12-23页 |
1.1.4 胰岛素激活PI3K/AKT传导通路 | 第23-25页 |
2 尼非韦罗体外活性测定 | 第25-37页 |
2.1 实验材料 | 第25-26页 |
2.1.1 主要使用材料 | 第25页 |
2.1.2 主要实验试剂与器械 | 第25页 |
2.1.3 主要实验试剂的配制 | 第25-26页 |
2.2 实验方法 | 第26-28页 |
2.2.1 细胞培养 | 第26页 |
2.2.2 台盼蓝抗染实验以及活细胞计数 | 第26-27页 |
2.2.3 MTT法检测尼非韦罗对细胞的增殖抑制率 | 第27-28页 |
2.2.4 尼非韦罗作用后的细胞形态学观察 | 第28页 |
2.3 实验结果 | 第28-37页 |
2.3.1 细胞增殖抑制率 | 第28-32页 |
2.3.2 细胞形态学变化 | 第32-37页 |
3 细胞凋亡率及表面CCR5含量测定 | 第37-43页 |
3.1 实验材料 | 第37页 |
3.1.1 主要使用材料 | 第37页 |
3.1.2 主要实验试剂与器械 | 第37页 |
3.2 实验方法 | 第37-38页 |
3.2.1 细胞培养 | 第37页 |
3.2.2 流式细胞仪检测细胞表面CCR5受体含量 | 第37-38页 |
3.2.3 流式细胞仪检测细胞细胞凋亡 | 第38页 |
3.3 实验结果 | 第38-42页 |
3.3.1 不同细胞表面CCR5受体含量的表达 | 第38-40页 |
3.3.2 不同细胞的凋亡检测 | 第40-42页 |
3.4 讨论 | 第42页 |
3.5 结论 | 第42-43页 |
4 尼非韦罗促进A549细胞凋亡机制 | 第43-54页 |
4.1 实验材料 | 第43-44页 |
4.1.1 主要使用材料 | 第43页 |
4.1.2 主要实验试剂与器械 | 第43-44页 |
4.2 实验方法 | 第44-46页 |
4.2.1 实验试剂的配制 | 第44-45页 |
4.2.2 细胞培养 | 第45页 |
4.2.3 细胞蛋白的提取 | 第45页 |
4.2.4 细胞蛋白浓度的测定 | 第45-46页 |
4.2.5 蛋白免疫印迹法(WesternBlot) | 第46页 |
4.3 结果 | 第46-50页 |
4.3.1 尼非韦罗作用细胞后相关蛋白的变化 | 第46-48页 |
4.3.2 胰岛素与尼非韦罗作用细胞后相关蛋白的变化 | 第48-50页 |
4.4 分析与讨论 | 第50-53页 |
4.4.1 PI3K/Akt信号传递路径 | 第50-51页 |
4.4.2 Akt/mTOR信号传递路径 | 第51-52页 |
4.4.3 Akt/P53/Bcl-2/Caspase信号传递路径 | 第52页 |
4.4.4 Akt/GSK-3/CyclinD1信号传递路径 | 第52-53页 |
4.5 结论 | 第53-54页 |
5 全文总结 | 第54-56页 |
5.1 本课题创新点 | 第54页 |
5.2 本课题的问题与展望 | 第54-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-62页 |
个人简历、在校期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第62页 |