摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 文献综述 | 第9-16页 |
1 植物对温度逆境适应的生理变化 | 第9-12页 |
1.1 低温胁迫 | 第9-10页 |
1.2 高温胁迫 | 第10-12页 |
2 载脂蛋白研究进展 | 第12-16页 |
2.1 载脂蛋白的分子结构 | 第12-13页 |
2.2 载脂蛋白的细胞定位 | 第13页 |
2.3 载脂蛋白的功能 | 第13-14页 |
2.4 植物载脂蛋白进化起源 | 第14-16页 |
第二章 材料和方法 | 第16-21页 |
1 材料 | 第16页 |
1.1 菌株和载体 | 第16页 |
1.2 实验材料 | 第16页 |
1.3 试剂 | 第16页 |
2 方法 | 第16-21页 |
2.1 核酸提取 | 第16-17页 |
2.2 目的基因克隆 | 第17-18页 |
2.3 PMD18-T 载体克隆目的基因 | 第18页 |
2.4 用 pCAMBIA-35S-OCS 载体保存目的基因 | 第18-19页 |
2.5 转化拟南芥 | 第19页 |
2.6 转基因拟南芥筛选 | 第19页 |
2.7 PCR 检测转基因植株 | 第19页 |
2.8 转基因植株温度胁迫及盐胁迫的叶绿素荧光动力学 | 第19-20页 |
2.9 大白菜 BrTIL2 与 BrTIL4 表达模式分析 | 第20-21页 |
第三章 结果与分析 | 第21-42页 |
1 大白菜 BrTILs 序列分析 | 第21-28页 |
1.1 基因序列的获得 | 第21页 |
1.2 序列比对与进化树分析 | 第21-23页 |
1.3 大白菜 BrTILs 表达模式分析 | 第23-26页 |
1.4 大白菜 BrTIL2 和 BrTIL4 基因编码区克隆 | 第26-28页 |
2 表达载体的构建 | 第28-31页 |
2.1 PMD18-T- BrTIL2 和 PMD18-T-BrTIL4 以及 pCAMBIA-35S-OCS 空载体的双酶切 | 第28-29页 |
2.2 pCAMBIA-35S-OCS-BrTIL2 和 pCAMBIA-35S-OCS-BrTIL4 菌落 PCR 及双酶切检测 | 第29-30页 |
2.3 pCAMBIA-35S-OCS-BrTIL2 和 pCAMBIA-35S-OCS-BrTIL4 载体的农杆菌菌落PCR | 第30-31页 |
3 转基因植株的筛选 | 第31-32页 |
4 转基因拟南芥的 PCR 检测 | 第32-34页 |
4.1 转基因植株的验证 | 第32-33页 |
4.2 转基因拷贝数的验证 | 第33页 |
4.3 拟南芥中 BrTIL2 与 BrTIL4 的表达模式分析 | 第33-34页 |
5 转基因拟南芥植株生理性状分析 | 第34-42页 |
5.1 BrTIL4 对盆栽正常生长条件下拟南芥的影响 | 第34-35页 |
5.2 低温胁迫对 30d 龄盆栽转基因拟南芥叶绿素荧光动力学的影响 | 第35-36页 |
5.3 高温胁迫对 30d 龄盆栽转基因拟南芥叶绿素荧光动力学的影响 | 第36-38页 |
5.4 盐胁迫对转基因拟南芥的影响 | 第38-42页 |
第四章 讨论 | 第42-46页 |
1 BrTILs 基因序列分析及其进化分析 | 第42页 |
2 BrTILs 表达模式分析 | 第42页 |
3 BrTIL4 对正常条件下拟南芥生长的影响 | 第42-43页 |
4 BrTIL2 与 BrTIL4 对拟南芥抗逆性的影响 | 第43-46页 |
4.1 BrTIL2 与 BrTIL4 在低温胁迫耐受性中的作用 | 第44页 |
4.2 BrTILs 在高温耐受性中的作用 | 第44页 |
4.3 BrTILs 在盐胁迫耐受性中的作用 | 第44-46页 |
第五章 结论与展望 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-55页 |
在读期间发表的论文 | 第55-56页 |
致谢 | 第56页 |