| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-27页 |
| 1.1 手性及手性拆分的意义 | 第10页 |
| 1.2 单构型手性化合物的获得的方法 | 第10-12页 |
| 1.3 手性固定相的分类 | 第12-26页 |
| 1.3.1 大环抗生素类手性固定相 | 第13-14页 |
| 1.3.2 环糊精类手性固定相 | 第14-16页 |
| 1.3.3 蛋白质型手性固定相 | 第16-17页 |
| 1.3.4 多糖手性固定相 | 第17-19页 |
| 1.3.5 冠醚型手性固定相 | 第19-21页 |
| 1.3.6 Pirkle型手性固定相 | 第21-22页 |
| 1.3.7 离子液体型手性固定相 | 第22-26页 |
| 1.4 本论文的研究目的及研究内容 | 第26-27页 |
| 第2章 新型咪唑离子液体手性固定相的合成 | 第27-47页 |
| 2.1 前言 | 第27-28页 |
| 2.2 关键中间体的合成 | 第28-31页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 关键中间体的合成路线 | 第29-30页 |
| 2.2.3 关键中间体的合成 | 第30-31页 |
| 2.3 光学纯手性关键中间体的手性拆分 | 第31-41页 |
| 2.3.1 色谱柱的选择 | 第31-34页 |
| 2.3.2 流动相的优化 | 第34-36页 |
| 2.3.3 载样量的考察 | 第36-37页 |
| 2.3.4 光学纯手性关键中间体的制备 | 第37-40页 |
| 2.3.5 关键手性中间体的旋光性 | 第40-41页 |
| 2.4 固定相的合成与制备 | 第41-45页 |
| 2.4.1 仪器与试剂 | 第41页 |
| 2.4.2 固定相的合成路线 | 第41-42页 |
| 2.4.3 手性选择剂的合成与数据标准 | 第42-45页 |
| 2.4.4 巯丙基硅胶的合成 | 第45页 |
| 2.4.5 手性固定相CSP 2-1~CSP 2-7的制备与数据表征 | 第45页 |
| 2.4.6 手性色谱柱的装填 | 第45页 |
| 2.5 本章小结 | 第45-47页 |
| 第3章 新型咪唑离子液体手性固定相的评价 | 第47-62页 |
| 3.1 前言 | 第47页 |
| 3.2 实验仪器、试剂及参数 | 第47-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-61页 |
| 3.3.1 固定相结构对手性选择性的影响 | 第48-53页 |
| 3.3.2 流动相对手性分离的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.3 极性有机流动相下甲醇比例影响 | 第54-56页 |
| 3.3.4 流动相中盐浓度的考察 | 第56-58页 |
| 3.3.5 流动相中酸碱比例的考察 | 第58-59页 |
| 3.3.6 流动相中酸种类的考察 | 第59-60页 |
| 3.3.7 手性分离机理的讨论 | 第60-61页 |
| 3.4 本章小结 | 第61-62页 |
| 第4章 不对称双侧链类肽手性固定相的合成及评价 | 第62-79页 |
| 4.1 前言 | 第62-63页 |
| 4.2 手性固定相的制备 | 第63-67页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第63-64页 |
| 4.2.2 手性固定相CSP 4-1~CSP 4-6的合成路线 | 第64页 |
| 4.2.3 手性选择剂的合成 | 第64-67页 |
| 4.2.4 巯基硅胶的合成 | 第67页 |
| 4.2.5 手性固定相CSP 4-1~CSP 4-6的制备 | 第67页 |
| 4.2.6 手性色谱柱的装填 | 第67页 |
| 4.3 手性固定相的评价 | 第67-68页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第68-78页 |
| 4.4.1 单侧链取代的CSP 4-1和双侧链取代的CSP 4-6的比较 | 第68-70页 |
| 4.4.2 双取代手性侧链结构的影响 | 第70-74页 |
| 4.4.3 流动相种类及组成对手性分离的影响 | 第74-76页 |
| 4.4.4 温度对手性分离的影响 | 第76-78页 |
| 4.5 本章小结 | 第78-79页 |
| 第5章 总结与展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 硕士期间发表论文和专利 | 第90-91页 |
| 附录Ⅰ | 第91-101页 |
