中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
前言 | 第15-20页 |
研究现状、成果 | 第15-18页 |
研究目的、方法 | 第18-20页 |
一、不同程度间歇低氧大鼠模型的建立 | 第20-28页 |
1.1 对象和方法 | 第20-23页 |
1.1.1 IH和CH气体环境模型的建立 | 第20-21页 |
1.1.2 动物模型的建立 | 第21-22页 |
1.1.3 实验标本的留取 | 第22-23页 |
1.1.4 统计方法 | 第23页 |
1.2 结果 | 第23-26页 |
1.2.1 氧舱内氧浓度实时监测结果 | 第23-24页 |
1.2.2 不同程度间歇低氧大鼠血气分析结果 | 第24-25页 |
1.2.3 不同程度间歇低氧暴露后大鼠血压的变化趋势 | 第25-26页 |
1.3 讨论 | 第26-27页 |
1.4 小结 | 第27-28页 |
二、不同程度间歇低氧大鼠血清MDA与抗氧化指标的变化 | 第28-51页 |
2.1 对象和方法 | 第28-32页 |
2.1.1 研究对象 | 第28页 |
2.1.2 血清制备 | 第28页 |
2.1.3 各指标测定方法 | 第28-32页 |
2.1.4 主要仪器及试剂 | 第32页 |
2.1.5 统计学方法 | 第32页 |
2.2 结果 | 第32-45页 |
2.2.1 不同程度间歇低氧大鼠血清MDA含量的比较 | 第32-37页 |
2.2.2 不同程度间歇低氧大鼠血清SOD活性的比较 | 第37-39页 |
2.2.3 不同程度间歇低氧大鼠血清GSH-PX活性的比较 | 第39-42页 |
2.2.4 不同程度间歇低氧大鼠血清T-AOC的比较 | 第42-45页 |
2.2.5 血清MDA含量与抗氧化指标之间的关系 | 第45页 |
2.3 讨论 | 第45-50页 |
2.4 小结 | 第50-51页 |
三、不同程度间歇低氧大鼠血管内皮系统氧化应激的变化 | 第51-74页 |
3.1 对象和方法 | 第51-54页 |
3.1.1 实验标本制备 | 第51页 |
3.1.2 NADPH氧化酶P22phox、NOX2和硫氧还蛋白mRNA的测定 | 第51-53页 |
3.1.3 主要试剂和仪器 | 第53页 |
3.1.4 统计学方法 | 第53-54页 |
3.2 结果 | 第54-62页 |
3.2.1 动脉内皮NADPH氧化酶亚基P22phox mRNA的表达结果 | 第54-57页 |
3.2.2 动脉内皮NOX2 mRNA的表达结果 | 第57-60页 |
3.2.3 动脉内皮硫氧还蛋白mRNA的表达结果 | 第60-62页 |
3.3 讨论 | 第62-73页 |
3.3.1 NADPH氧化酶 | 第64-68页 |
3.3.2 硫氧还蛋白 | 第68-73页 |
3.4 小结 | 第73-74页 |
四、不同程度间歇低氧对大鼠心肌组织氧化应激状态的影响 | 第74-98页 |
4.1 对象和方法 | 第74-77页 |
4.1.1 实验对象及标本制备 | 第74页 |
4.1.2 实验方法 | 第74-76页 |
4.1.3 主要试剂和仪器 | 第76页 |
4.1.4 统计学方法 | 第76-77页 |
4.2 结果 | 第77-91页 |
4.2.1 心肌匀浆上清液中MDA含量测定结果 | 第77-80页 |
4.2.2 心肌匀浆上清液中SOD活性测定结果 | 第80-84页 |
4.2.3 心肌匀浆上清液中T-AOC测定结果 | 第84-86页 |
4.2.4 心肌组织p22phox亚基mRNA的表达水平 | 第86-88页 |
4.2.5 心肌组织NOX2 mRNA的表达水平 | 第88-89页 |
4.2.6 心肌组织硫氧还蛋白mRNA的表达水平 | 第89-91页 |
4.2.7 心肌组织p22phox亚基mRNA的表达水平与心肌MDA的关系 | 第91页 |
4.3 讨论 | 第91-97页 |
4.3.1 间歇低氧与心血管系统氧化应激反应 | 第91-95页 |
4.3.2 NADPH氧化酶与间歇低氧所致心肌氧化应激反应 | 第95-96页 |
4.3.3 硫氧还蛋白与心肌氧化应激 | 第96-97页 |
4.4 小结 | 第97-98页 |
全文结论 | 第98-100页 |
论文创新点 | 第100-101页 |
参考文献 | 第101-113页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第113-114页 |
综述 | 第114-141页 |
睡眠呼吸暂停模式间歇低氧与氧化应激的研究进展 | 第114-131页 |
综述参考文献 | 第131-141页 |
致谢 | 第141页 |