| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-14页 |
| 第2章 材料和方法 | 第14-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第14页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第14-15页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-24页 |
| 2.2.1 器材的准备 | 第16页 |
| 2.2.2 肾缺血再灌注损伤模型制作与实验分组 | 第16-17页 |
| 2.2.3 肾功能检测与评估 | 第17页 |
| 2.2.4 小鼠肾组织的收集 | 第17-18页 |
| 2.2.5 实时定量 PCR 检测 HIF-1α、VEGF、Dll4、Notch1、Hes1mRNA 的表达变化 | 第18-20页 |
| 2.2.6 实时定量 RT-PCR 检测 miR-210 的表达水平 | 第20-21页 |
| 2.2.7 Western blot 定量检测各组 HIF-1α、Notch1、Hes1 蛋白的表达水平 | 第21-23页 |
| 2.2.8 统计学处理 | 第23-24页 |
| 第3章 结果 | 第24-29页 |
| 3.1 肾缺血再灌注损伤模型判断 | 第24-25页 |
| 3.1.1 小鼠肾功能的检测 | 第24页 |
| 3.1.2 肾组织病理学改变 | 第24-25页 |
| 3.2 肾缺血再灌注损伤后 HIF-VEGF-Notch 信号通路相关基因的表达变化 | 第25-29页 |
| 3.2.1 小鼠肾组织总 RNA 质量鉴定 | 第25-26页 |
| 3.2.2 实时定量 RT-PCR 检测 miR-210、VEGF、HIF-1αmRNA 的表达变 化 | 第26-27页 |
| 3.2.3 实时定量 RT-PCR 检测 Dll4、Notch1、Hes1mRNA 的表达变化 | 第27页 |
| 3.2.4 采用 Western Blot 方法检测 HIF-1α、Notch1、Hes1 蛋白的表达变化 | 第27-29页 |
| 第4章 讨论 | 第29-35页 |
| 4.1 HIF/VEGF 信号通路促进肾缺血损伤后血管新生 | 第29-31页 |
| 4.2 VEGF-Notch 信号通路促进肾缺血损伤后血管新生 | 第31-33页 |
| 4.3 miR-210 调控 Notch 信号通路促进肾缺血损伤后血管新生 | 第33-35页 |
| 第5章 结论 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
| 综述 | 第41-46页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
