| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第1章 引言 | 第9-18页 |
| 1.1 动脉粥样硬化简介 | 第9-11页 |
| 1.1.1 动脉粥样硬化的形成原因及过程 | 第9-10页 |
| 1.1.2 动脉粥样硬化的危害 | 第10-11页 |
| 1.1.3 动脉粥样硬化的研究现状 | 第11页 |
| 1.2 神经节苷脂及其在动脉粥样硬化中的作用 | 第11-13页 |
| 1.3 脂多糖及其在动脉粥样硬化中的作用 | 第13-14页 |
| 1.4 氧化型低密度脂蛋白及其在动脉粥样硬化中的作用 | 第14页 |
| 1.5 激光扫描共聚焦显微镜（LSCM）技术 | 第14-16页 |
| 1.5.1 激光共聚焦扫描显微镜工作原理 | 第15页 |
| 1.5.2 激光共聚焦显微镜在生物学及医学上的应用 | 第15-16页 |
| 1.6 流式细胞技术工作原理 | 第16-17页 |
| 1.6.1 流式细胞技术的原理 | 第17页 |
| 1.6.2 流式细胞技术在生物学及医学上的应用 | 第17页 |
| 1.7 研究目标和内容 | 第17-18页 |
| 第2章 GM3对LPS诱导的内皮细胞的影响 | 第18-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 细胞 | 第18页 |
| 2.1.2 抗体 | 第18页 |
| 2.1.3 试剂 | 第18页 |
| 2.1.4 仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.2 相关试剂与培养基配制 | 第19-20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-30页 |
| 2.3.1 人脐静脉内皮细胞复苏 | 第20-21页 |
| 2.3.2 人脐静脉内皮细胞传代 | 第21页 |
| 2.3.3 人脐静脉内皮细胞冻存 | 第21页 |
| 2.3.4 单核细胞复苏 | 第21-22页 |
| 2.3.5 单核细胞传代 | 第22页 |
| 2.3.6 单核细胞冻存 | 第22-23页 |
| 2.3.7 人脐静脉内皮细胞鉴定 | 第23页 |
| 2.3.8 共聚焦检测不同浓度LPS对内皮细胞黏附分子的表达 | 第23-24页 |
| 2.3.9 流式细胞术检测不同浓度LPS对内皮细胞黏附分子的表达 | 第24页 |
| 2.3.10 共聚焦检测不同浓度GM3对内皮细胞黏附分子的表达 | 第24-25页 |
| 2.3.11 流式细胞术检测不同浓度GM3对内皮细胞黏附分子的表达 | 第25页 |
| 2.3.12 外源添加GM3后共聚焦检测LPS诱导的内皮细胞黏附分子表达的表达 | 第25-26页 |
| 2.3.13 外源添加GM3后流式细胞术检测LPS诱导的内皮细胞黏附分子的表达 | 第26-27页 |
| 2.3.14 外源添加GM3后共聚焦检测LPS诱导的内皮细胞对单核细胞的粘附 | 第27页 |
| 2.3.15 RNA抽提 | 第27-28页 |
| 2.3.16 RNA完整性检测 | 第28页 |
| 2.3.17 RNA浓度检测 | 第28页 |
| 2.3.18 CDNA合成 | 第28-29页 |
| 2.3.19 PCR | 第29-30页 |
| 2.4 试验结果 | 第30-38页 |
| 2.4.1 人脐静脉内皮细胞HUVEC的鉴定 | 第30-31页 |
| 2.4.2 共聚焦检测不同浓度LPS对内皮细胞粘附分子表达的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.3 流式细胞术检测不同浓度LPS对内皮细胞黏附分子表达的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.4 共聚焦检测不同浓度GM3对内皮细胞黏附分子表达的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.5 流式细胞术检测不同浓度GM3对内皮细胞黏附分子表达的影响 | 第34页 |
| 2.4.6 GM3反转LPS诱导的内皮细胞黏附分子表达的共聚焦检测 | 第34-36页 |
| 2.4.7 GM3反转LPS诱导的内皮细胞黏附分子的流式细胞术检测 | 第36页 |
| 2.4.8 GM3反转LPS诱导的内皮细胞对单核细胞的粘附 | 第36-37页 |
| 2.4.9 GM3反转LPS诱导的内皮细胞表达黏附分子的核酸检测 | 第37-38页 |
| 2.5 讨论 | 第38-39页 |
| 第3章 GM3对OX-LDL诱导的内皮细胞的影响 | 第39-50页 |
| 3.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.2 相关试剂与培养基配置 | 第39页 |
| 3.3 试验方法 | 第39-44页 |
| 3.3.1 人脐内皮细胞复苏 | 第39页 |
| 3.3.2 人脐内皮细胞传代 | 第39页 |
| 3.3.3 人脐内皮细胞冻存 | 第39页 |
| 3.3.4 单核细胞复苏 | 第39页 |
| 3.3.5 单核细胞传代 | 第39页 |
| 3.3.6 单核细胞冻存 | 第39-40页 |
| 3.3.7 人脐静脉内皮细胞鉴定 | 第40页 |
| 3.3.8 共聚焦检测不同浓度OX-LDL对内皮细胞黏附分子的表达 | 第40页 |
| 3.3.9 流式细胞术检测不同浓度OX-LDL对内皮细胞黏附分子的表达 | 第40-41页 |
| 3.3.10 外源添加GM3后共聚焦检测OX-LDL诱导的内皮细胞黏附分子的表达 | 第41页 |
| 3.3.11 外源添加GM3后流式细胞术检测OX-LDL诱导的内皮细胞黏附分子的表达 | 第41-42页 |
| 3.3.12 外源添加GM3后共聚焦检测OX-LDL诱导的内皮细胞对单核细胞的粘附 | 第42-43页 |
| 3.3.13 RNA抽提 | 第43-44页 |
| 3.3.14 RNA完整性检测 | 第44页 |
| 3.3.15 RNA浓度检测 | 第44页 |
| 3.3.16 CDNA合成 | 第44页 |
| 3.3.17 PCR | 第44页 |
| 3.4 实验结果 | 第44-49页 |
| 3.4.1 共聚焦检测不同浓度OX-LDL对内皮细胞黏附分子表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.2 流式细胞术检测不同浓度OX-LDL对内皮细胞黏附分子表达的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.3 GM3反转OX-LDL诱导的内皮细胞黏附分子表达的共聚焦检测 | 第46-47页 |
| 3.4.4 GM3反转OX-LDL诱导的内皮细胞黏附分子表达的流式细胞术检测 | 第47页 |
| 3.4.5 GM3 反转 OX-LDL 诱导的内皮细胞对单核细胞粘附 | 第47-48页 |
| 3.4.6 GM3反转OX-LDL诱导的内皮细胞表达黏附分子的核酸检测 | 第48-49页 |
| 3.5 结论 | 第49-50页 |
| 第4章 结论与展望 | 第50-52页 |
| 4.1 结论 | 第50-51页 |
| 4.2 展望 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
