中文摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
中英文缩略词 | 第14-15页 |
综述 | 第15-31页 |
参考文献 | 第24-31页 |
前言 | 第31-33页 |
第一部分 加减驻景方对Akt转染后ARPE-19细胞增殖活性的影响 | 第33-46页 |
第一节 加减驻景方含药血清对ARPE-19细胞活性的影响 | 第33-39页 |
1 材料 | 第33-34页 |
1.1 动物及细胞 | 第33页 |
1.2 药物 | 第33页 |
1.3 主要试剂及配制 | 第33-34页 |
1.4 主要的仪器 | 第34页 |
2 方法 | 第34-36页 |
2.1 加减驻景方含药血清的制备 | 第34-35页 |
2.2 细胞培养 | 第35-36页 |
2.3 CCK-8法检测不同浓度血清及药物对ARPE-19细胞活性的影响 | 第36页 |
2.4 统计学分析 | 第36页 |
3 结果 | 第36-38页 |
3.1 不同浓度空白血清对ARPE-19细胞活性的影响 | 第36-37页 |
3.2 不同浓度含药血清对ARPE-19细胞活性的影响 | 第37页 |
3.3 不同浓度康柏西普对ARPE-19细胞活性的影响 | 第37-38页 |
4 小结 | 第38-39页 |
第二节 加减驻景方含药血清对Akt转染后ARPE-19细胞增殖活性的影响 | 第39-46页 |
1 材料 | 第39-41页 |
1.1 动物及细胞 | 第39页 |
1.2 药物 | 第39页 |
1.3 主要试剂 | 第39-40页 |
1.4 主要试剂配制 | 第40-41页 |
1.5 主要仪器 | 第41页 |
2 方法 | 第41-44页 |
2.1 加减驻景方含药血清的制备 | 第41页 |
2.2 Akt基因转染细胞模型的建立 | 第41-42页 |
2.3 免疫印迹法(Western Blot)检测验证转染细胞模型 | 第42-43页 |
2.4 实验分组及给药 | 第43页 |
2.5 CCK-8法检测不同分组对Akt转染后ARPE-19细胞增殖活性的影响 | 第43-44页 |
2.6 统计学分析 | 第44页 |
3 结果 | 第44-45页 |
3.1 Western blot免疫印迹法检测模型组Akt蛋白的表达 | 第44页 |
3.2 不同浓度血清及药物对Akt转染后ARPE-19细胞增殖的影响 | 第44-45页 |
4 小结 | 第45-46页 |
第二部分 加减驻景方含药血清对Akt转染后ARPE-19细胞表达Akt、mTOR、HIF-1α、VEGF的影响 | 第46-59页 |
1 材料 | 第46-47页 |
1.1 动物及细胞 | 第46页 |
1.2 药物 | 第46页 |
1.3 主要试剂及配制 | 第46-47页 |
1.4 主要的仪器 | 第47页 |
2 方法 | 第47-50页 |
2.1 加减驻景方含药血清的制备 | 第47页 |
2.2 细胞培养 | 第47页 |
2.3 实验分组及给药 | 第47页 |
2.4 ELISA法检测各组对转染后ARPE-19细胞培养上清液中VEGF蛋白表达的影响 | 第47-48页 |
2.5 Real time-PCR法检测各组对Akt转染后ARPE-19细胞中Akt、mTOR、HIF-1α及VEGF mRNA转录水平 | 第48-49页 |
2.6 Western-blot法检测各组对Akt转染后ARPE-19细胞中Akt、mTOR、HIF-1α及VEGF蛋白表达量的影响 | 第49-50页 |
2.7 统计学分析 | 第50页 |
3 结果 | 第50-54页 |
3.1 ELISA法检测分析 | 第50-51页 |
3.2 Real time-PCR法检测分析 | 第51-52页 |
3.3 Western-blot法检测分析 | 第52-54页 |
4 小结 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-59页 |
讨论 | 第59-66页 |
1 中医对CNV的认识 | 第59页 |
2 西医对CNV的认识 | 第59-60页 |
3 加减驻景方的立方依据 | 第60-61页 |
4 CNV形成的分子机制 | 第61-62页 |
5 加减驻景方对CNV生成的作用机制探讨 | 第62-64页 |
5.1 细胞模型的建立和思考 | 第62-63页 |
5.2 加减驻景方对模型细胞作用的机制探讨 | 第63-64页 |
6 不足与展望 | 第64-66页 |
结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-71页 |
附图 | 第71-81页 |
致谢 | 第81-82页 |
作者简历 | 第82页 |