| 英、汉名词缩写及对照 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 引言 | 第11-15页 |
| 材料和方法 | 第15-28页 |
| 1. 材料 | 第15-18页 |
| ①抗体 | 第15页 |
| ②主要试剂 | 第15页 |
| ③主要溶液配制 | 第15-16页 |
| ④AAA病人及对照组血浆及一般资料、临床生化指标获取 | 第16页 |
| ⑤耗材 | 第16-17页 |
| ⑥引物序列 | 第17页 |
| ⑦主要仪器设备 | 第17-18页 |
| 2. 实验方法 | 第18-28页 |
| 1. 动物造模及分组 | 第18页 |
| 2. 微量泵埋植方法 | 第18-19页 |
| 3. 小鼠血压测定 | 第19页 |
| 4. 小鼠血管超声测定 | 第19页 |
| 5. 小鼠主动脉获取 | 第19-20页 |
| 6. PCR检测基因表达量 | 第20-21页 |
| 7. Western blot检测蛋白的表达量 | 第21-23页 |
| 8. 苏木素伊红(H&E)染色 | 第23页 |
| 9. 免疫组织化学染色(IHC) | 第23-24页 |
| 10. 免疫荧光染色 | 第24页 |
| 11. 小鼠主动脉细胞流式检测 | 第24-25页 |
| 12. 酶联免疫吸附实验 | 第25页 |
| 13. 明胶酶谱法测定基质金属蛋白酶活性 | 第25-27页 |
| 14. 统计学分析 | 第27-28页 |
| 实验结果 | 第28-43页 |
| 1. 药物(SB265610)抑制CXCR2后抑制小鼠AAA发生率、严重程度 | 第28-30页 |
| 2. 抑制CXCR2可抑制Ang Ⅱ诱导的主动脉壁主动脉重塑 | 第30-31页 |
| 3. 抑制CXCR2可抑制主动脉壁内巨噬细胞的浸润 | 第31-32页 |
| 4. 抑制CXCR2抑制了小鼠循环血液中中性粒细胞比例 | 第32-33页 |
| 5. 抑制CXCR2可以抑制主动脉壁内巨噬细胞浸润及炎性因子释放 | 第33-34页 |
| 6. 抑制CXCR2可抑制主动脉壁内MMP2及MMP9表达及活性 | 第34-36页 |
| 7. 抑制CXCR2可抑制主动脉壁内氧化应激反应 | 第36-37页 |
| 8. 腹主动脉瘤患者血浆中AGF水平升高 | 第37-40页 |
| 9. 血浆AGF水平与临床生化指标的相关性 | 第40-42页 |
| 10. AGF水平与腹主动脉瘤直径之间的关系 | 第42-43页 |
| 讨论 | 第43-47页 |
| 小结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 文献综述 | 第55-66页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简历 | 第67-68页 |
