| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第10-12页 |
| 第二章 材料与实验方法 | 第12-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第12-13页 |
| 2.1.1 试剂与培养基 | 第12页 |
| 2.1.2 实验动物及细胞株 | 第12页 |
| 2.1.3 抗体 | 第12-13页 |
| 2.1.4 实验耗材与仪器设 | 第13页 |
| 2.1.6 引物 | 第13页 |
| 2.2 实验方法 | 第13-22页 |
| 2.2.1 BCA法蛋白定量 | 第13-14页 |
| 2.2.2 SDS-PAGE | 第14页 |
| 2.2.3 Western Blot | 第14页 |
| 2.2.4 RNA的提取 | 第14-15页 |
| 2.2.5 逆转录RNA | 第15-16页 |
| 2.2.6 Real-time PCR | 第16页 |
| 2.2.7 小鼠骨髓细胞诱导成巨噬细胞 | 第16页 |
| 2.2.8 胞内染色 | 第16-17页 |
| 2.2.9 细胞粘附 | 第17页 |
| 2.2.10 迁移实验 | 第17-18页 |
| 2.2.11 MTT法检测细胞增殖 | 第18页 |
| 2.2.12 使用Dye eFluor? 670 检测细胞增殖 | 第18页 |
| 2.2.13 C57BL/6 小鼠肿瘤模型的建立及肿瘤体积的计算 | 第18-19页 |
| 2.2.14 建立清除巨噬细胞的C57BL/6 小鼠肿瘤模型 | 第19页 |
| 2.2.15 C57BL/6 小鼠单个细胞悬液的制备 | 第19页 |
| 2.2.16 C57BL/6 小鼠单个肿瘤细胞悬液的制备 | 第19-20页 |
| 2.2.17 clodronate -liposomes的制备 | 第20页 |
| 2.2.18 流式细胞染色 | 第20页 |
| 2.2.19 免疫荧光染色 | 第20-21页 |
| 2.2.20 统计方法 | 第21-22页 |
| 第三章 B16-tmCRT稳转细胞株的构建和体外肿瘤的特性分析 | 第22-29页 |
| 3.1 引言 | 第22页 |
| 3.2 B16-tmCRT和B16-EGFP稳转细胞的构建和筛选 | 第22-23页 |
| 3.3 B16-tmCRT和B16-EGFP稳转细胞的鉴定 | 第23-25页 |
| 3.4 B16-tmCRT和B16-EGFP稳转细胞体外肿瘤特性的研究 | 第25-28页 |
| 3.4.1 膜型CRT对B16细胞体外增殖的影响 | 第25-26页 |
| 3.4.2 膜型CRT对B16细胞体外迁移的影响 | 第26-27页 |
| 3.4.3 膜型CRT对B16细胞体外粘附的影响 | 第27-28页 |
| 3.5 本章小结 | 第28-29页 |
| 第四章 膜型CRT对B16细胞体内成瘤能力的影响 | 第29-37页 |
| 4.1 膜型CRT促进B16在C57BL/6小鼠体内成瘤 | 第29-30页 |
| 4.2 膜型CRT对荷瘤小鼠体内免疫细胞的影响 | 第30-32页 |
| 4.3 清除小鼠体内巨噬细胞后膜型CRT对B16细胞体内成瘤性作用减弱 | 第32-36页 |
| 4.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第五章 膜型CRT在体外对巨噬细胞的影响 | 第37-43页 |
| 5.1 膜型CRT促进巨噬细胞的吞噬 | 第37-39页 |
| 5.2 膜型CRT对骨髓细胞在体外分化的影响 | 第39-42页 |
| 5.2.1 γ 射线处理细胞不会引起CRT外翻至细胞膜表面 | 第39-40页 |
| 5.2.2 膜型CRT促进巨噬细胞向M2分化 | 第40-42页 |
| 5.3 本章小结 | 第42-43页 |
| 第六章 讨论 | 第43-47页 |
| 6.1 膜型CRT蛋白在体外对B16细胞增殖、粘附和迁移能力的影响 | 第43-44页 |
| 6.2 膜型CRT蛋白在体内对B16细胞成瘤性的影响 | 第44-45页 |
| 6.3 膜型CRT蛋白在体外对巨噬细胞的影响 | 第45-46页 |
| 6.4 总结 | 第46-47页 |
| 文献综述 | 第47-52页 |
| 参考文献 | 第52-62页 |
| 英文缩略词 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 个人简历 | 第65-66页 |
