摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
本文主要缩略语注释表 | 第12-13页 |
第一章 引言 | 第13-19页 |
第一节 产前应激 | 第13-14页 |
1.1.1 产前应激对子代的影响 | 第13页 |
1.1.2 产前应激研究现状 | 第13-14页 |
第二节 重复经颅磁刺激 | 第14-17页 |
1.2.1 重复经颅磁刺激的方法概述 | 第14-15页 |
1.2.2 重复经颅磁刺激的作用机制 | 第15-17页 |
第三节 BDNF-TrKB信号通路 | 第17-18页 |
1.3.1 脑源性神经营养因子概述 | 第17页 |
1.3.2 酪氨酸受体激酶B概述 | 第17页 |
1.3.3 BDNF-TrKB信号通路对突触可塑性的影响 | 第17-18页 |
第四节 本研究的意义、目的及内容 | 第18-19页 |
1.4.1 研究意义及目的 | 第18页 |
1.4.2 研究内容 | 第18-19页 |
第二章 实验材料与方法 | 第19-32页 |
第一节 实验材料 | 第19-23页 |
2.1.1 实验仪器 | 第19-20页 |
2.1.2 实验试剂及药品 | 第20-21页 |
2.1.3 实验主要试剂配方 | 第21-23页 |
2.1.3.1 K252a溶液配方 | 第21页 |
2.1.3.2 免疫蛋白印迹实验所使用的主要试剂配方 | 第21-23页 |
第二节 实验方法 | 第23-31页 |
2.2.1 实验动物及模型制备 | 第23-24页 |
2.2.2 Morris水迷宫实验 | 第24-25页 |
2.2.3 in vivo电生理实验 | 第25-27页 |
2.2.4 脑组织处理 | 第27页 |
2.2.5 免疫蛋白印迹(Western blot)实验 | 第27-28页 |
2.2.5.1 蛋白定量及变性 | 第27页 |
2.2.5.2 Western blot实验操作步骤 | 第27-28页 |
2.2.6 实时定量PCR(RT-PCR) | 第28-29页 |
2.2.6.1 组织RNA的提取 | 第28-29页 |
2.2.6.2 反转录为cDNA | 第29页 |
2.2.6.3 实时定量PCR反应 | 第29页 |
2.2.7 伊红-苏木精(HE)染色 | 第29-31页 |
2.2.8 实验数据统计方法 | 第31页 |
第三节 实验流程图 | 第31-32页 |
第三章 实验结果 | 第32-48页 |
第一节 Morris水迷宫实验结果 | 第32-38页 |
3.1.1 定位航行训练和空间探索试验结果 | 第32-35页 |
3.1.2 反向训练阶段和反向空间探索试验结果 | 第35-38页 |
第二节 in vivo电生理结果 | 第38-41页 |
第三节 Western bolt以及RT-PCR结果 | 第41-46页 |
3.3.1 海马BDNF、TrKB、p-CREB/CREB蛋白的表达量检测 | 第41-43页 |
3.3.2 海马突触相关蛋白的mRNA水平和蛋白水平的检测 | 第43-46页 |
第四节 HE染色结果 | 第46-48页 |
第四章 实验讨论 | 第48-52页 |
第一节 rTMS通过BDNF-TrKB通路改善产前应激造成的子代学习记忆损伤 | 第48-49页 |
第二节 rTMS通过BDNF-TrKB通路改善产前应激造成的子代海马突触可塑性功能损伤 | 第49-50页 |
第三节 rTMS提高了产前应激子代鼠海马中降低的BDNF-TrKB通路相关蛋白的表达 | 第50-51页 |
第四节 rTMS通过BDNF-TrKB通路提高产前应激造成的突触相关蛋白的减少 | 第51页 |
第五节 rTMS通过BDNF-TrKB通路改善产前应激造成的子代海马神经元数量减少 | 第51-52页 |
第五章 结论与展望 | 第52-54页 |
第一节 结论 | 第52-53页 |
第二节 展望 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
个人简历 | 第62-63页 |
硕士在学期间发表论文 | 第63页 |